[發明專利]一種誘導汗腺功能性修復的方法在審
| 申請號: | 201910895337.6 | 申請日: | 2019-09-20 |
| 公開(公告)號: | CN110684802A | 公開(公告)日: | 2020-01-14 |
| 發明(設計)人: | 孫曉艷;陳潤開;付小兵;黃瑾 | 申請(專利權)人: | 中國人民解放軍總醫院 |
| 主分類號: | C12N15/867 | 分類號: | C12N15/867;C12N15/90;C12N15/12;C12N5/10 |
| 代理公司: | 11319 北京潤澤恒知識產權代理有限公司 | 代理人: | 莎日娜 |
| 地址: | 100853*** | 國省代碼: | 北京;11 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 汗腺 表皮角質細胞 強力霉素 原基 質粒 誘導 基底層 基質膠 慢病毒 培養基培養細胞 特異性培養基 功能性修復 培養基培養 啟動子序列 基因水平 生理功能 細胞形成 組織結構 細胞株 重編程 構建 支架 轉染 修飾 種質 體內 細胞 修復 移植 再生 基因 應用 聯合 | ||
1.一種誘導汗腺功能性修復的方法,其特征在于,包括以下步驟:
設計EDA啟動子序列,構建pGLV-H1-GFP-EDA sgRNA質粒;
獲取pHAGE TRE dCas9-VP64質粒;
利用慢病毒分別對pGLV-H1-GFP-EDA sgRNA質粒和pHAGE TRE dCas9-VP64質粒進行包裝;
獲取基底層表皮角質細胞;
利用慢病毒包裝的pGLV-H1-GFP-EDA sgRNA質粒及慢病毒包裝的pHAGE-TRE-dCas9-VP64質粒依次轉染所述表皮角質細胞,并進行EDA基因鑒定,獲得穩定過表達EDA基因的細胞株;
利用具有強力霉素的汗腺培養基培養所述細胞株,誘導其體外重編程為汗腺樣細胞;
在基質膠環境下,利用具有強力霉素的汗腺培養基培養所述汗腺樣細胞,誘導形成類汗腺原基;
將所述類汗腺原基移植至汗腺喪失區,并利用強力霉素誘導形成再生汗腺。
2.根據權利要求1所述的方法,其特征在于,所述啟動子序列為:
F-5′-ACCCGTTCCTGCGCGACAG-3′,
R-5′-TCATTCCCTCGGCGGGCCGA-3′。
3.根據權利要求1所述的方法,其特征在于,所述具有強力霉素的培養基,包括DMEM/F12、Gltamax、Hepes、B27、EGF和bFGF。
4.根據權利要求3所述的方法,其特征在于,所述Gltamax、Hepes和B27的體積分數均為1%,EGF的濃度為50ng/mL,bFGF的濃度為20ng/mL。
5.根據權利要求1所述的方法,其特征在于,所述在基質膠環境下,利用具有強力霉素的培養基,包括:
將濃度為10mg/mL下基質膠與密度為2.5×105/mL的汗腺樣細胞懸液等體積混勻后鋪板,待基質膠凝固后加入含強力霉素的汗腺培養基進行培養,得到類汗腺原基。
6.根據權利要求5所述的方法,其特征在于,所述汗腺培養基中強力霉素的濃度為10ug/mL。
7.根據權利要求1所述的方法,其特征在于,所述利用慢病毒包裝的pGLV-H1-GFP-EDAsgRNA質粒及慢病毒包裝的pHAGE-TRE-dCas9-VP64質粒依次轉染所述表皮角質細胞,并進行EDA基因鑒定,獲得穩定過表達EDA基因的細胞株,包括:
利用聚凝胺對所述表皮角質細胞進行預處理;
采用Lipo2000作為轉染試劑,利用pMD2G和PsPAX作為包裝載體,將pGLV-H1-GFP-EDAsgRNA質粒與包裝載體混合后,轉入人腎上皮細胞系239T細胞中進行第一次病毒包裝,收集第一次包裝后的病毒液,將病毒液轉入預處理后的表皮角質細胞中進行第一次轉染,將第一次轉染后的表皮角質細胞換液至含HKGS的EpiLife培養基中進行傳代培養,后通過細胞流式分選,獲得GFP表達強陽性的細胞亞群;
利用聚凝胺對所述GFP表達強陽性的細胞亞群進行預處理;
采用Lipo2000作為轉染試劑,利用pMD2G和PsPAX作為包裝載體,將pHAGE-TRE-dCas9-VP64質粒與包裝載體混合后,轉入人腎上皮細胞系293T細胞中進行第二次病毒包裝,然后收集第二次包裝后的病毒液,將病毒液轉入所述GFP表達強陽性的細胞亞群進行第二轉染;并通過抗生素G418進行陽性細胞篩選;
將G418篩選陽性的細胞亞群進行EDA基因鑒定,獲得穩定過表達EDA基因的細胞株。
8.根據權利要求7所述的方法,其特征在于,所述預處理后的表皮角質細胞的細胞融合度為40%,所述預處理后的GFP表達強陽性的細胞亞群的細胞融合度為40%。
9.根據權利要求7所述的方法,其特征在于,所述包裝載體中,pMD2G和PsPAX的質量比為1:3。
10.根據權利要求1所述的方法,其特征在于,所述獲取基底層表皮角質細胞,包括:
取新鮮包皮組織,利用醫用酒精進行消毒,將消毒后的包皮組織除去皮下部分,并用含有10%青霉素/鏈霉素混合液的PBS反復沖洗,隨后剪成1cm×1cm×2mm大小組織塊,加入0.2%dispase II溶液,浸沒組織,4℃消化過夜,再將表皮層與真皮層分離,剪碎,加入0.25%的胰蛋白酶/EDTA,37℃消化10min,加入含10%胎牛血清的DMEM終止消化,100目濾網過濾細胞懸液,收集濾過的細胞懸液于離心管中,1000rmp,離心5min,棄去上清液,加入含1%HKGS的EpiLife培養基重懸細胞,在37℃、5%CO2的環境下進行孵育過夜,再更換培養基進行傳代培養,即得到基底層表皮角質細胞。
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