[發(fā)明專利]一種毛細血管畸形相關(guān)多基因的捕獲測序方法在審
| 申請?zhí)枺?/td> | 201910058369.0 | 申請日: | 2019-01-22 |
| 公開(公告)號: | CN109777857A | 公開(公告)日: | 2019-05-21 |
| 發(fā)明(設(shè)計)人: | 劉贇;蔡韌 | 申請(專利權(quán))人: | 寧波愛她基因科技有限公司 |
| 主分類號: | C12Q1/6806 | 分類號: | C12Q1/6806;C12Q1/6869;C12Q1/6883 |
| 代理公司: | 暫無信息 | 代理人: | 暫無信息 |
| 地址: | 315031 浙江省寧*** | 國省代碼: | 浙江;33 |
| 權(quán)利要求書: | 查看更多 | 說明書: | 查看更多 |
| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 捕獲 畸形 毛細血管 多基因 測序 高通量測序技術(shù) 基因捕獲技術(shù) 基因組DNA 片段化DNA 變異類型 多個基因 接頭連接 雜交捕獲 靶基因 毛細管 片段化 補平 突變 融合 檢測 | ||
1.一種毛細血管畸形相關(guān)多基因的捕獲測序方法,其特征在于,包括如下步驟:
S1 基因組DNA的提取和片段化
1.1 準備試劑如下:QIAamp DNAMini試劑盒;
1.2 基因組DNA的提取,用QIAamp DNAMini試劑盒對被檢者進行組織提取,被檢者組織的取材應取自表皮以下的真皮層,包含毛細血管為宜;
1.3 基因組DNA片段化,使用Covaris儀器,并按推薦操作流程進行操作,目標片段大小為200-300bp;
S2 片段化DNA末端補平
2.1 準備試劑如下:End prep mix4;
2.2 配制反應體系:在PCR管中加入DNA和End prep mix4,配制完成后,渦旋并短暫離心;
2.3 將配制完成的反應體系置于PCR儀上,啟動反應程序;
S3 接頭連接
3.1 準備試劑如下:Rapid Ligation Buffer2、Rapid DNA Ligase、DNA Adaptor X、高純水、80%乙醇、AHTS DNA Clean Beads;
3.2 配制反應體系:在PCR管中加入模板、Rapid Ligation Buffer2、Rapid DNALigase、DNA Adaptor X、高純水,配制完成后,渦旋并短暫離心;
3.3 將配制完成的反應體系置于PCR儀上,啟動反應程序;
3.4 連接產(chǎn)物純化
3.4.1 加80μL磁珠到上步產(chǎn)物中,輕輕吹打10次以保證整個體系均勻;室溫孵育5分鐘,使文庫結(jié)合到磁珠上;
3.4.2 離心管短暫離心并置于磁力架上分離磁珠和液體;
3.4.3 保持離心管在磁力架上,待溶液澄清(約5分鐘)后,小心棄去上清,注意不要擾動磁珠;
3.4.4 保持離心管在磁力架上,沿著管壁緩慢加入200μL新鮮配制的80%乙醇,注意加入乙醇時不要擾動磁珠,孵育30秒后小心移除上清;
3.4.5 重復步驟3.4.4,共漂洗兩次;
3.4.6 用2-10μL移液器吸走所有殘留乙醇;開蓋在空氣中干燥3-5分鐘;
3.4.7 加入22.5μL 滅菌水混勻后靜置5分鐘;
3.4.8 離心管短暫離心并置于磁力架上分離磁珠和液體;
3.4.9 保持離心管在磁力架上,待溶液澄清(約5分鐘)后,將20μL上清液轉(zhuǎn)移至新的1.5mL的離心管中;
S4 捕獲前PCR
4.1 準備試劑如下:PCR Primer mix2、Amplification mix3、80%乙醇、AHTS DNAClean Beads;
4.2 配制反應體系:在PCR管中加入模板、PCR Primer mix2、Amplification mix3,配制完成后,渦旋并短暫離心;
4.3 將配制完成的反應體系置于PCR儀上,啟動反應程序;
4.4 捕獲前PCR產(chǎn)物純化
4.4.1 加45μL磁珠到上步產(chǎn)物中,輕輕吹打10次以保證整個體系均勻;室溫孵育5分鐘,使文庫結(jié)合到磁珠上;
4.4.2 離心管短暫離心并置于磁力架上分離磁珠和液體;
4.4.3 保持離心管在磁力架上,待溶液澄清(約5分鐘)后,小心棄去上清,注意不要擾動磁珠;
4.4.4 保持離心管在磁力架上,沿著管壁緩慢加入200μL新鮮配制的80%乙醇,注意加入乙醇時不要擾動磁珠,孵育30秒后小心移除上清;
4.4.5 重復步驟4.4.4,共漂洗兩次;
4.4.6 用2-10μL移液器吸走所有殘留乙醇;開蓋在空氣中干燥3-5分鐘;
4.4.7 磁珠晾干后,將離心管從磁力架上取下,加入22.5μL水覆蓋磁珠,使用移液器吹打混勻磁珠;
4.4.8 室溫孵育2分鐘;如果磁珠干燥開裂,適當延長孵育時間;
4.4.9 將離心管短暫離心后置于磁力架中,分離磁珠和液體直到溶液澄清(約5分鐘);若少量的磁珠不再吸附在磁力架上,用移液器在上清中吹打混勻未吸附的磁珠,使其重新懸浮,繼續(xù)孵育直至沒有磁珠殘留在上清中;
4.4.10 小心吸取21μL上清轉(zhuǎn)移至相應編號的新的小PCR管中;
4.4.11 進行Qubit定量;
S5 雜交捕獲
5.1 準備試劑如下:探針、Cot-1 DNA、XGen universal Blockers-Tsmix、2×Hybridization Buffer、Hybridization Buffer Enhancer、Nuclease-free water、2×Bead wash Buffer、10×wash Buffer I、10×wash Buffer II、10×wash Buffer III、10×stringent wash Buffer、Streptavidin Beads 270、PCR Primer Mix2、AmplificationMix3、80%乙醇、AHTS DNA Clean Beads;
5.2 配制反應體系:在PCR管中加入Pool barcoded library、Cot-1 DNA、XGenuniversal Blockers-Tsmix、配制完成后,渦旋并短暫離心;
5.3 將上步溶液在抽真空儀里45℃抽干35分鐘;
5.4 配制雜交反應體系:在抽干的PCR管中加入2×Hybridization Buffer、Hybridization Buffer Enhancer、Nuclease-free water,配制完成后,先室溫放置5分鐘,吹打后再室溫靜置5分鐘;然后將反應體系置于PCR儀中,95℃,10分鐘;結(jié)束后,立刻拿出放在事先準備好的冰盒上,靜置2分鐘;立即加入4μL XGen lockdown probe pool,快速吹打混勻10秒,短暫離心,終體積為17μL;65℃,過夜(至少4小時);
需要說明的是,采用IDT Inc合成探針,探針區(qū)域見附表1;
5.5 雜交后處理:準備1x工作液,包括Bead wash Buffer、wash Buffer I、washBuffer II、wash Buffer III、stringent wash Buffer;在室溫平衡Streptavidin Beads270 30分鐘,充分振蕩混勻Streptavidin Beads 270 15秒;在1.5mL管子中加100μLStreptavidin Beads 270,將管子放在磁力架上,Beads分層,棄去上清;加入200μL1×Beadwash Buffer,渦旋10秒,放回磁力架,分層,棄去上清;再次加入200μL1×Bead washBuffer,渦旋10秒,放回磁力架,分層,棄去上清;加入100μL1×Bead wash Buffer,振蕩;將重懸的100μL Beads加到0.2mLPCR管,放到磁力架,棄去上清,立即進入下一步;
5.6 將雜交產(chǎn)物結(jié)合到Streptavidin Beads 270上:將處理后的雜交產(chǎn)物放入有Beads的0.2mLPCR管中,吹打混勻10次;金屬浴65℃(75℃),45分鐘;每隔15分鐘,渦旋3秒,2500rpm;
5.7 洗滌磁珠,棄除未結(jié)合的DNA:加入100μL1×Wash Buffer I到上步產(chǎn)物的管子中,短暫渦旋后轉(zhuǎn)移至1.5mL管子中,將管子放在磁力架上,棄去上清;加入200μL1×stringentwash Buffer上下吹打10次;金屬浴65℃,5分鐘;放到磁力架上,棄去上清;再次加入200μL1×stringent wash Buffer上下吹打10次;金屬浴65℃,5分鐘;放到磁力架上,棄去上清;RT洗:加入200μL1×wash Buffer I,渦旋2分鐘,放到磁力架,棄去上清;加入200μL1×washBuffer II,渦旋1分鐘,放到磁力架,棄去上清;加入200μL1×wash Buffer III,渦旋30秒,放到磁力架,棄去上清;重懸Beads,從磁力架上拿下EP管,加入20μLNuclease-free water(后帶Beads做PCR),上下吹打10次;
S6 捕獲后PCR:
6.1 準備試劑如下:PCR Primer Mix2、Amplification Mix3、80%乙醇、AHTS DNAClean Beads;
6.2 配制反應體系:在PCR管中加入模板,PCR Primer Mix2、Amplification Mix3,配制完成后,渦旋并短暫離心;
6.3 將配制完成的反應體系置于PCR儀上,啟動反應程序;
6.4 擴增后產(chǎn)物進行Qubit定量;
6.5 捕獲后PCR產(chǎn)物純化
6.5.1 渦旋磁珠使其充分混勻,各加75μL磁珠到上面的產(chǎn)物中,輕輕吹打10次以保證整個體系均勻;室溫孵育5分鐘,使文庫結(jié)合到磁珠上;
6.5.2 離心管短暫離心并置于磁力架上分離磁珠和液體;
6.5.3 保持離心管在磁力架上,待溶液澄清(約5分鐘)后,小心棄去上清,注意不要擾動磁珠;
6.5.4 保持離心管在磁力架上,沿著管壁緩慢加入200μL新鮮配制的80%乙醇,注意加入乙醇時不要擾動磁珠,孵育30秒后小心移除上清;
6.5.5 重復步驟6.5.4,共漂洗兩次;
6.5.6 用2-10μL移液器吸走所有殘留乙醇;開蓋在空氣中干燥3-5分鐘;
6.5.7 磁珠晾干后,將離心管從磁力架上取下,加入22μL IDTE覆蓋磁珠,使用移液器吹打混勻磁珠;
6.5.8 室溫孵育2分鐘;如果磁珠干燥開裂,適當延長孵育時間;
6.5.9 將離心管短暫離心后置于磁力架中,分離磁珠和液體直到溶液澄清(約5分鐘);若少量的磁珠不再吸附在磁力架上,用移液器在上清中吹打混勻未吸附的磁珠,使其重新懸浮,繼續(xù)孵育直至沒有磁珠殘留在上清中;
6.5.10 小心吸取20μL上清轉(zhuǎn)移至相應編號的新的1.5mL離心管中,進行Qubit定量;
6.5.11 雜交捕獲后產(chǎn)物可以在-80℃長期保存,等待最終上機測序。
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