[發(fā)明專利]一種細(xì)胞擴(kuò)增的方法在審
| 申請(qǐng)?zhí)枺?/td> | 201710227450.8 | 申請(qǐng)日: | 2017-04-10 |
| 公開(kāi)(公告)號(hào): | CN107151655A | 公開(kāi)(公告)日: | 2017-09-12 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 張斌;李猛;陳虎;趙龍 | 申請(qǐng)(專利權(quán))人: | 中國(guó)人民解放軍第三O七醫(yī)院 |
| 主分類號(hào): | C12N5/0789 | 分類號(hào): | C12N5/0789;C12N5/0775 |
| 代理公司: | 北京市振邦律師事務(wù)所11389 | 代理人: | 汪妍瑜 |
| 地址: | 100071*** | 國(guó)省代碼: | 北京;11 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 一種 細(xì)胞 擴(kuò)增 方法 | ||
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及細(xì)胞擴(kuò)增領(lǐng)域,特別是造血干細(xì)胞系包擴(kuò)增領(lǐng)域.
背景技術(shù)
自1989[1]年第一例臍帶血移植開(kāi)展以來(lái),臍帶血作為造血干細(xì)胞(hematopoieticstem cells,HSCs)的重要來(lái)源一直備受關(guān)注,臍帶血移植的優(yōu)勢(shì)在于其不需要嚴(yán)格的人類白細(xì)胞主要抗原(human leukocyte antigen,HLA)配型,對(duì)供者無(wú)傷害且不存在倫理問(wèn)題,感染風(fēng)險(xiǎn)小,可冷凍保存使用便捷[2,3]等。制約其在臨床中大量應(yīng)用的最主要障礙在于臍帶血中HSCs的數(shù)量有限,移植后會(huì)導(dǎo)致造血恢復(fù)延遲,感染風(fēng)險(xiǎn)增加等問(wèn)題[4]。而雙份臍帶血移植則會(huì)增加移植的風(fēng)險(xiǎn),導(dǎo)致植入延遲等問(wèn)題出現(xiàn),且會(huì)增加患者經(jīng)濟(jì)負(fù)擔(dān)[5]。近年來(lái)國(guó)內(nèi)外一直嘗試對(duì)臍帶血來(lái)源造血干祖細(xì)胞(hematopoietic stemprogenitorcells,HSPCs)進(jìn)行體外擴(kuò)增,以解決其細(xì)胞數(shù)量不足的問(wèn)題。目前HSPCs擴(kuò)增技術(shù)主要有細(xì)胞因子擴(kuò)增技術(shù),化學(xué)分子擴(kuò)增技術(shù),聯(lián)合培養(yǎng)擴(kuò)增技術(shù)以及三維培養(yǎng)系統(tǒng)的應(yīng)用[6]。涉及臍血源HSPCs擴(kuò)增實(shí)驗(yàn)已經(jīng)進(jìn)入臨床實(shí)驗(yàn)階段,并證實(shí)了擴(kuò)增后HSPCs的安全性及有效性[7],但最佳的擴(kuò)增條件至今尚沒(méi)有明確的共識(shí)。
造血微環(huán)境在HSCs的成長(zhǎng)分化過(guò)程中扮演重要角色,體外培養(yǎng)過(guò)程中能否更有效的模擬造血微環(huán)境,是決定HSPCs體外擴(kuò)增效果的重要先決條件。間充質(zhì)干細(xì)胞(mesenchyma stem cell,MSC)作為造血微環(huán)境的重要組成部分,可以分泌造血生長(zhǎng)因子和細(xì)胞因子,為HSPCs的增殖提供信號(hào),研究表明其與HSPCs共培養(yǎng)可以顯著提高擴(kuò)增效率[8]。UM 171是造血干細(xì)胞龕中篩選出的選擇性的人HSCs再生激動(dòng)劑,可以選擇性的增加長(zhǎng)期HSPCs的再生[9]。鑒于以上結(jié)果,為更有效的模擬造血微環(huán)境,本發(fā)明采用與臍血同源的MSC與UM171聯(lián)合應(yīng)用于臍血HSPCs的體外擴(kuò)增培養(yǎng),取得了較好的效果,目前該方法國(guó)內(nèi)外均無(wú)相關(guān)報(bào)道。
發(fā)明內(nèi)容
附圖說(shuō)明
圖1是倒置顯微鏡下觀察MSCs及CD34+細(xì)胞培養(yǎng)形態(tài),a為MSC貼壁培養(yǎng)細(xì)胞照片(X200);b為UM171組培養(yǎng)細(xì)胞照片(X40)
圖2是流式細(xì)胞儀對(duì)MSCs表面抗原檢測(cè)結(jié)果
圖3是光學(xué)顯微鏡下觀察MSCs分化誘導(dǎo)成像(X200),a圖為MSCs成骨誘導(dǎo)后細(xì)胞照片;b圖為MSCs成脂誘導(dǎo)后細(xì)胞照片;c圖為成軟骨誘導(dǎo)后細(xì)胞照片。
圖4是各組培養(yǎng)過(guò)程不同時(shí)間點(diǎn)細(xì)胞總數(shù)變化情況
圖5是各組細(xì)胞培養(yǎng)后流式檢測(cè)情況
圖6是細(xì)胞凋亡流式檢測(cè)圖a圖為對(duì)照組凋亡流式檢測(cè)圖;b圖為聯(lián)合組凋亡流式檢測(cè)圖
圖7是倒置顯微鏡下觀察各譜系集落形成(X200),其中a圖為CFU-E;b圖為BFU-E;c圖為CFU-GM;d圖為CFU-GEMM
具體實(shí)施方式
一、材料
1.標(biāo)本采集:實(shí)驗(yàn)用臍帶及臍血均源自307醫(yī)院產(chǎn)科,報(bào)經(jīng)醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn)(倫理編號(hào)KY-2016-8-36)并征得產(chǎn)婦及家屬同意。健康足月順產(chǎn)產(chǎn)婦娩出胎盤后,無(wú)菌剪刀采集臍帶30cm,并收集于相應(yīng)臍血儲(chǔ)存于臍血采集袋中。
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C12N 微生物或酶;其組合物
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