[發(fā)明專利]一種簡便、高效且通用的植物葉綠體基因組測序方法在審
| 申請(qǐng)?zhí)枺?/td> | 201710062510.5 | 申請(qǐng)日: | 2017-01-22 |
| 公開(公告)號(hào): | CN106834465A | 公開(公告)日: | 2017-06-13 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 聶小軍;宋衛(wèi)寧;鄧平川;崔立操;卞建新 | 申請(qǐng)(專利權(quán))人: | 西北農(nóng)林科技大學(xué) |
| 主分類號(hào): | C12Q1/68 | 分類號(hào): | C12Q1/68;G06F19/22 |
| 代理公司: | 暫無信息 | 代理人: | 暫無信息 |
| 地址: | 712100 陜*** | 國省代碼: | 陜西;61 |
| 權(quán)利要求書: | 查看更多 | 說明書: | 查看更多 |
| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 一種 簡便 高效 通用 植物 葉綠體 基因組 方法 | ||
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及生物科學(xué)領(lǐng)域,具體涉及一種簡便、高效且通用的植物葉綠體基因組測序方法。
背景技術(shù)
葉綠體是綠色植物細(xì)胞內(nèi)所特有的細(xì)胞器,是細(xì)胞進(jìn)行光合作用的場所,是一切能量的最初來源。葉綠體擁有自身的DNA和遺傳體系,與生物進(jìn)化與及細(xì)胞起源有很密切關(guān)系,葉綠體基因組是分子進(jìn)化、系統(tǒng)發(fā)育和分子標(biāo)記領(lǐng)域的重要研究對(duì)象,而獲得目的生物的葉綠體基因組全序列,則成為該領(lǐng)域研究人員的首要目標(biāo)。傳統(tǒng)的植物葉綠體基因組測序通常采用通用引物長鏈PCR或是葉綠體基因組文庫的葉綠體基因組測序策略,一般都要求大量新鮮材料、提取較高純度的葉綠體DNA,操作步驟多,流程復(fù)雜,周期長,而且分離高純度的葉綠體DNA需要根據(jù)不同植物物種的特性優(yōu)化體系,難度較大,通用性差,往往成為葉綠體基因組測序的限制因素。
發(fā)明內(nèi)容
為解決上述問題,本發(fā)明提供了一種簡便、高效且通用的植物葉綠體基因組測序方法。
為實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明采取的技術(shù)方案為:
一種簡便、高效且通用的植物葉綠體基因組測序方法,包括如下步驟:
S1、直接分離、純化植物葉片的基因組DNA
為保證基因組DNA有足夠的葉綠體DNA,將植株在強(qiáng)光下曝光2天后,選擇較深綠色的葉片100mg,利用常規(guī)微量DNA提取方法(如CTAB)提取葉片的基因組DNA(不用預(yù)先分離葉綠體,再提取葉綠體DNA等繁瑣的實(shí)驗(yàn)步驟),保存于低溫備用;
S2、基因組DNA的高通量文庫構(gòu)建及測序
取上述提取的基因組DNA 5ug,采用超聲波進(jìn)行物理隨機(jī)打斷或者dsDNA水解酶進(jìn)行酶切,然后用MinEITte PCR回收試劑盒(Qiagen,德國)回收片段化的葉綠體DNA,再將片段化的DNA末端補(bǔ)齊,并加上測序接頭,用MinElute PCR回收試劑盒回收加上接頭的DNA,電泳并利用膠回收試劑盒(Tiangen,China)回收200-500bp的片段,PCR擴(kuò)增回收片段構(gòu)建測序文庫;測序文庫構(gòu)建和測序反應(yīng)采用IIITmina公司的標(biāo)準(zhǔn)程序(IIIumina,USA),測序平臺(tái)為IIIumina Hiseq4000,文庫大小為300bp,測序策略為PE150(測序平臺(tái)和策略可隨意調(diào)整,適用于任意高通量測序平臺(tái));
S3、測序數(shù)據(jù)的預(yù)處理
測序后采用IIIumina HCS 1.1軟件進(jìn)行測序圖像的轉(zhuǎn)換及質(zhì)量值計(jì)算,將圖像信息轉(zhuǎn)變?yōu)樾蛄行畔ⅲ缓笕コd體序列、低質(zhì)量序列獲得可用于候選分析的測序數(shù)據(jù);然后從NCBI下載其所收錄的所有植物葉綠體基因組序列(ftp://ftp.ncbi.nlm.nih.gov/refseq/release/plastid)作為參考序列,將獲得的測序數(shù)據(jù)利用botwie軟件進(jìn)行基因組映射,具體命令為bowtie2--al-conc alconc--un-conc unconc--un unpaired--al aligned-x all_plant_chloroplast_sequence-1 clean_data_P1-2 clean_data_P2-sout.sam,將能比對(duì)上參考基因組的左右兩端序列分別放入到mapped_reads_p1和mapped_reads_p2文件中,用于候選的葉綠體基因組組裝(數(shù)據(jù)分析標(biāo)準(zhǔn)化);
S4、葉綠體基因組的組裝和拼接
對(duì)上述步驟得到mapped reads數(shù)據(jù)集,利用soapdenovo軟件對(duì)得到的reads進(jìn)行從頭拼裝得到序列contigs,然后利用Pair-end關(guān)系對(duì)contigs進(jìn)行連接,再用gapcloser進(jìn)行補(bǔ)洞,得到scaffold序列,然后再用所有mapped reads映射(mapping)所有scaffold,再一次填補(bǔ)空缺(gap)位置;同時(shí),選擇與目標(biāo)物種近緣關(guān)系最近的已測序的葉綠體為參考,利用MAQ軟件將mapped reads對(duì)參考基因組進(jìn)行映射(mapping),得到一條一致序列(Consensus sequence)。然后利用blat工具將拼接得到的scaffold序列按照參考基因組進(jìn)行排序,空缺區(qū)域用consensus序列對(duì)應(yīng)位置填補(bǔ),得到葉綠體基因組的草圖;最后,再用所有mapped reads映射(mapping)草圖,補(bǔ)可能的空缺位置,最終得到葉綠體基因組精細(xì)圖;(采用高通量測序可以十分經(jīng)濟(jì)的方式獲得超高深度覆蓋度的測序結(jié)果,拼接操作十分簡單而且準(zhǔn)確度高)。
S5、葉綠體基因組的驗(yàn)證和評(píng)估
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