[發(fā)明專利]基于微流控芯片的模擬藥物體內(nèi)代謝過程的肝-腎體系有效
| 申請?zhí)枺?/td> | 201610893829.8 | 申請日: | 2016-10-14 |
| 公開(公告)號: | CN107955781B | 公開(公告)日: | 2021-03-09 |
| 發(fā)明(設(shè)計)人: | 秦建華;郭雅瓊;李中玉;陶婷婷 | 申請(專利權(quán))人: | 中國科學(xué)院大連化學(xué)物理研究所 |
| 主分類號: | C12M3/00 | 分類號: | C12M3/00;C12Q1/02 |
| 代理公司: | 沈陽晨創(chuàng)科技專利代理有限責(zé)任公司 21001 | 代理人: | 鄭虹 |
| 地址: | 116023 *** | 國省代碼: | 遼寧;21 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 基于 微流控 芯片 模擬 藥物 體內(nèi) 代謝 過程 體系 | ||
1.一種模擬藥物肝代謝對腎臟影響的肝-腎體系微流控芯片,其特征在于:該微流控芯片主要由頂層芯片、多孔濾膜、底層芯片組成,多孔濾膜通過不可逆封接頂層芯片的下表面,封有頂層芯片的多孔濾膜下表面通過PDMS與底層芯片的上表面粘合封接;
頂層芯片由U形的頂層芯片主通道(1)和頂層芯片主通道入口(11)連接而成;
底層芯片由左側(cè)主通道(3)、右側(cè)主通道(6)、膠原通道(7)、膠原通道入口(8)、底層芯片左側(cè)主通道入口(9)以及底層芯片右側(cè)主通道入口(10)組成,膠原通道(7)左連左側(cè)主通道(3),右連右側(cè)主通道(6);所述底層芯片的左側(cè)主通道(3)為I形,所述底層芯片的右側(cè)主通道(6)為U型,所述底層芯片細(xì)胞膠原通道(7)為“豐”字形,在膠原通道中間的位置上為橫向結(jié)構(gòu),膠原通道通過橫向結(jié)構(gòu)與左側(cè)主通道(3)和右側(cè)主通道(6)相連接,橫向結(jié)構(gòu)的數(shù)量為1~10個;膠原通道(7)與左側(cè)主通道(3)的交界為半球形界面(12),膠原側(cè)為凹面;
頂層芯片主通道(1)通過多孔濾膜(5)下連底層芯片左側(cè)主通道(3);底層芯片左側(cè)主通道(3)通過多孔濾膜(5)上連頂層芯片主通道(1),右連膠原通道(7);
所述底層芯片是由高度不同的兩部分組成,左側(cè)主通道(3)、右側(cè)主通道(6)高度為200-500μm,膠原通道(7)高度為80-200μm。
2.按照權(quán)利要求1所述的微流控芯片,其特征在于:所述芯片材料為可透光透氣的PDMS聚合物,PDMS單體與引發(fā)劑比例為5~10:1,多孔濾膜材料為聚碳酸酯膜,聚碳酸酯膜的孔徑為0.01~10um。
3.一種基于微流控芯片的模擬藥物體內(nèi)代謝過程的肝-腎體系,其特征在于:采用權(quán)利要求1所述的微流控芯片,按照以下方法構(gòu)建而成:
(1)芯片預(yù)處理
設(shè)計制作芯片,用移液器將配制好的膠原工作液加入膠原通道,加1mL PBS緩沖液于培養(yǎng)皿中,將固定芯片的培養(yǎng)皿放入培養(yǎng)箱中孵育30min,促使膠原由粘稠狀液體變?yōu)楣麅鰻钅z,凝膠過程結(jié)束后,細(xì)胞主通道加入新鮮的細(xì)胞培養(yǎng)液;
(2)細(xì)胞的接種與培養(yǎng)
肝細(xì)胞調(diào)整至1~5×106cells/mL的細(xì)胞懸液,加入頂層芯片主通道,細(xì)胞貼附于多孔濾膜界面生長,將芯片平移放入37℃培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng),每隔24h換液一次;
提取原代大鼠腎小球微組織,調(diào)整至104~105cells/mL的細(xì)胞懸液,取10μL細(xì)胞懸液加入左側(cè)主通道,左側(cè)主通道向上,膠原通道向下側(cè)立培養(yǎng)過夜,使細(xì)胞貼附在底層芯片左側(cè)主通道與膠原通道的半球形界面,在光學(xué)顯微鏡下觀察可見腎小球微組織貼附于膠原界面生長,將芯片平移放入37℃培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)、每隔24h換液一次;
(3)待細(xì)胞生長狀態(tài)良好,可進行后續(xù)試驗;觀察藥物經(jīng)代謝后對腎小球功能的影響及其他。
4.按照權(quán)利要求3所述一種基于微流控芯片的模擬藥物體內(nèi)代謝過程的肝-腎體系應(yīng)用,其特征在于:可采用權(quán)利要求3所述體系,對藥物毒性進行評價,具體過程如下:
(1)使用CCK-8試劑盒進行細(xì)胞活性的檢測,CCK-8試劑:細(xì)胞培養(yǎng)基的體積比為1:9,混合均勻成檢測工作液,加入底層芯片左側(cè)主通道,置培養(yǎng)箱中3小時后,轉(zhuǎn)入96孔板中,酶標(biāo)儀測定450nm處吸光度,用于對細(xì)胞活力進行定量,作為藥物毒性的指標(biāo)之一;
(2)乳酸脫氫酶(LDH)漏出,收集芯片通道內(nèi)細(xì)胞培養(yǎng)液,使用LDH試劑盒,操作檢測培養(yǎng)液LDH漏出濃度,用于觀察藥物對細(xì)胞的損傷程度,作為藥物毒性的指標(biāo)之一;
(3)免疫熒光,常規(guī)免疫染色操作,熒光顯微鏡觀察拍照,進行Live/Dead染色,觀察死活細(xì)胞數(shù);ZO-1染色,觀察細(xì)胞緊密連接情況;F-actin染色,觀察細(xì)胞骨架蛋白等作為藥物毒性的指標(biāo);
(4)蛋白濾過,使用白蛋白,加入左側(cè)主通道,1小時后,收集右側(cè)主通道培養(yǎng)液,白蛋白試劑盒操作檢測蛋白濃度,觀察中分子量白蛋白的濾過率,作為藥物對腎濾過功能影響的指標(biāo);
(5)蛋白濾過,使用IgG,加入左側(cè)主通道,熒光顯微鏡下于0min、15min、30min、60min拍照,分析IgG滲透性,觀察高分子量蛋白的濾過率,作為藥物對腎濾過功能影響的指標(biāo)。
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