[發(fā)明專利]一種利用熒光檢測微囊藻細(xì)胞DNA損傷的方法有效
| 申請?zhí)枺?/td> | 201610109195.2 | 申請日: | 2016-02-26 |
| 公開(公告)號: | CN105543399B | 公開(公告)日: | 2019-07-16 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 吳振斌;魯志營;劉碧云;何燕;賀鋒;周巧紅;徐棟;張甬元 | 申請(專利權(quán))人: | 中國科學(xué)院水生生物研究所 |
| 主分類號: | C12Q1/6858 | 分類號: | C12Q1/6858;C12Q1/6806 |
| 代理公司: | 武漢宇晨專利事務(wù)所 42001 | 代理人: | 王敏鋒 |
| 地址: | 430072 湖*** | 國省代碼: | 湖北;42 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 一種 利用 熒光 檢測 微囊藻 細(xì)胞 dna 損傷 方法 | ||
本發(fā)明公開一種利用熒光檢測微囊藻細(xì)胞DNA損傷的方法,其步驟:(a)將待檢測樣品和對照樣品均分別平均分成三小組;(b)去除細(xì)胞角質(zhì)鞘:離心收集樣品中藻細(xì)胞并重懸浮于SE緩沖液中洗滌;(c)細(xì)胞裂解:將細(xì)胞分別重懸浮于Lysis裂解液,加入蛋白酶K和十二烷基磺酸鈉,使細(xì)胞裂解;(d)細(xì)胞DNA鏈解旋:改變pH,使T、P和B樣品在不同條件下解旋;(e)染色:分別向以上T、P和B樣品中加入Hoechest 33258染色;(f)熒光測定:離心后于熒光檢測器中檢測上清液的熒光強(qiáng)度;(g)結(jié)果計(jì)算:根據(jù)待測樣品和對照樣品中T、B和P樣品的熒光來計(jì)算DNA鏈的斷裂水平。本方法易于掌握,并且靈敏度高,DNA鏈上單個(gè)斷裂位點(diǎn)即可檢測到。
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及環(huán)境檢測與生態(tài)毒理評價(jià)技術(shù)領(lǐng)域,更具體涉及一種微囊藻細(xì)胞DNA損傷檢測的方法,它適用于水體中有毒有害物質(zhì)的生態(tài)安全評價(jià)及水環(huán)境中致癌致畸因子的早期監(jiān)測預(yù)警。
背景技術(shù)
隨著水體富營養(yǎng)化的加劇,藍(lán)藻水華現(xiàn)象時(shí)常發(fā)生。藍(lán)藻水華造成水質(zhì)急劇惡化,魚類大量死亡,生境退化。微囊藻作為水華的主要藻種之一,不僅增殖能力強(qiáng),而且產(chǎn)生微囊藻毒素,導(dǎo)致家畜死亡,也可能引發(fā)人類肝臟癌變。DNA作為中心法則的核心,對細(xì)胞的分裂、代謝與調(diào)控起著決定性作用,DNA損傷作為一個(gè)靈敏而有代表性的生物標(biāo)志物,廣泛應(yīng)用于生態(tài)毒理與安全評價(jià)中。針對不同控藻方法的微囊藻DNA損傷評估,不僅有助于藍(lán)藻水華控制技術(shù)的開發(fā);同時(shí),微囊藻對環(huán)境中致癌致畸因子響應(yīng)靈敏,通過對微囊藻DNA損傷的檢測,可實(shí)現(xiàn)對水體環(huán)境中致癌致畸因子的早期監(jiān)測預(yù)警。
目前還沒有專門針對微囊藻細(xì)胞DNA損傷檢測的方法。Singh等(“A simpletechnique for quantitation of low levels of DNA damage in individual cells”.Singh et al.,Experimental Cell Research,卷:175期:1頁:184-191,1988年3月15日)在前人方法的基礎(chǔ)上,提出了單細(xì)胞凝膠電泳法測定細(xì)胞DNA損傷。該方法簡便,靈敏,在醫(yī)學(xué)和毒理學(xué)檢測研究中有較多的應(yīng)用。然而,該方法只能檢測單鏈DNA損傷,并且操作主觀性強(qiáng),不同操作者實(shí)驗(yàn)結(jié)果偏差較大,因而限制了這一方法的廣泛應(yīng)用。最近,有一些學(xué)者提出了利用PCR擴(kuò)增的方式來檢測DNA鏈斷裂的方法,如RAPD、rDNA和ARDRA(“Evidencesshowing ultraviolet-B radiation-induced damage of DNA in cyanobacteria andits detection by PCR assay”.Kumar.,et al,Biochemical and Biophysical ResearchCommunications,卷:318期:4頁:1025-1030,2004年6月11日),以及通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR(“DNA supercoiling suppresses real-time PCR:a new approach to thequantification of mitochondrial DNA damage and repair”.Chen et al.,NucleicAcids Research,卷:35期:4頁:1377-1388,2007年2月11日)的辦法來定量DNA損傷的程度,這些方法在特定細(xì)胞DNA鏈斷裂檢測中顯示了很高的特異性,但應(yīng)用藻類DNA損傷中還有待進(jìn)一步實(shí)驗(yàn)證實(shí),并且該方法操作難度大,需要大型儀器如熒光定量PCR儀,測試費(fèi)用高,難以普遍應(yīng)用于環(huán)境檢測。本方法是根據(jù)不同斷裂水平的DNA鏈在堿性溶液中解旋速率不同,通過熒光染色對解旋后DNA鏈中雙鏈部分進(jìn)行定量來測定細(xì)胞DNA損傷。其原理為:DNA鏈斷裂后,自由末端增多,雙鏈DNA在適宜的堿性pH值下氫鍵斷裂,雙鏈DNA解鏈,自由末端越多,解旋速率越快。雙鏈DNA熒光染料Hoechst 33258能選擇性的與雙鏈DNA結(jié)合,而不與單鏈DNA結(jié)合,由此可以計(jì)算DNA單雙鏈的比例,通過比較相同解旋時(shí)間后DNA單雙鏈的比例,來計(jì)算DNA鏈斷裂的水平。本方法不會(huì)受到染色體結(jié)構(gòu)的影響,并且靈敏度高,可以檢測到染色體上的單個(gè)斷裂位點(diǎn),因此非常適合測定浮游生物DNA鏈斷裂。
發(fā)明內(nèi)容
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