[發(fā)明專利]用于適配子篩選的DNA雙鏈分離方法以及適配子篩選方法和新的適配子在審
| 申請(qǐng)?zhí)枺?/td> | 201410142420.3 | 申請(qǐng)日: | 2014-04-11 |
| 公開(kāi)(公告)號(hào): | CN104974998A | 公開(kāi)(公告)日: | 2015-10-14 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 梁超;李德芳;何小鵑;呂誠(chéng);姜淼;牛旭艷;劉彪;郭保生;劉進(jìn);何冰;黨蕾;張戈;呂愛(ài)平 | 申請(qǐng)(專利權(quán))人: | 中國(guó)中醫(yī)科學(xué)院中醫(yī)臨床基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)研究所 |
| 主分類號(hào): | C12N15/10 | 分類號(hào): | C12N15/10;C12N15/115;C12Q1/68 |
| 代理公司: | 北京市隆安律師事務(wù)所 11323 | 代理人: | 劉東方 |
| 地址: | 100700 北*** | 國(guó)省代碼: | 北京;11 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 用于 配子 篩選 dna 分離 方法 以及 | ||
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及生物學(xué)技術(shù)領(lǐng)域,具體涉及一種以細(xì)胞為靶的核酸適配子篩選過(guò)程中DNA雙鏈的分離方法以及適配子的篩選方法及新的適配子。
背景技術(shù)
核酸適配子(aptamer)是通過(guò)指數(shù)富集配基的系統(tǒng)進(jìn)化技術(shù)(Systematic?evolution?of?ligands?by?exponential?enrichment,SELEX)篩選得到的、能特異結(jié)合靶物質(zhì)的單鏈寡聚核苷酸(ssDNA或RNA)。核酸適配子與抗體功能類似,但是與抗體相比,核酸適配子具有更多優(yōu)勢(shì),如更高的親和力與特異性、無(wú)免疫原性、能化學(xué)合成、成本低、可化學(xué)標(biāo)記、穩(wěn)定性好、易于保存等。而且,核酸適配子的靶物質(zhì)更為廣泛,包括金屬離子、氨基酸、核酸、多肽、蛋白質(zhì),并從單一靶標(biāo)擴(kuò)展至完整的病毒顆粒和細(xì)胞等復(fù)合物靶標(biāo)[1]。因此,近年來(lái)核酸適配子不斷被應(yīng)用于基礎(chǔ)研究、藥物開(kāi)發(fā)、臨床應(yīng)用等方面。同時(shí),核酸適配子的篩選技術(shù)也得到不斷發(fā)展,適用性、簡(jiǎn)便性不斷改善[2]。以細(xì)胞為靶的適配子篩選技術(shù),即cell-SELEX,是在原SELEX基礎(chǔ)上發(fā)展起來(lái)的細(xì)胞篩選技術(shù),該技術(shù)是以活細(xì)胞為篩選對(duì)象,不需要事先了解靶細(xì)胞表面的分子特征,通過(guò)引入非靶細(xì)胞進(jìn)行反篩獲得特異性識(shí)別靶細(xì)胞的核酸適配子。其篩選過(guò)程主要包括以下幾個(gè)步驟[3]:①構(gòu)建文庫(kù):體外合成中間為30-60nt的隨機(jī)序列、兩端為18-40nt的固定序列的單鏈寡核苷酸文庫(kù);②孵育篩選:將該文庫(kù)與靶細(xì)胞孵育,收集與靶標(biāo)特異結(jié)合的核酸,然后再與非靶細(xì)胞孵育,收集未結(jié)合核酸;③擴(kuò)增(PCR):PCR擴(kuò)增與靶細(xì)胞結(jié)合、同時(shí)與非靶細(xì)胞不結(jié)合的核酸,得到雙鏈DNA(dsDNA);④分離:分離dsDNA,獲得單鏈DNA(ssDNA)亞文庫(kù),或轉(zhuǎn)錄得到RNA亞文庫(kù);⑤富集:重復(fù)上述過(guò)程5-20個(gè)循環(huán),一些與靶標(biāo)有高親和力和高特異性的DNA或RNA分子不斷得到富集;⑥克隆鑒定:流式細(xì)胞儀檢測(cè)ssDNA的富集情況,待富集達(dá)到一定程度時(shí),進(jìn)行克隆、測(cè)序和鑒定。
在cell-SELEX篩選適配子的過(guò)程中,分離雙鏈PCR產(chǎn)物,獲得可用于后續(xù)篩選的單鏈DNA亞文庫(kù)是整個(gè)過(guò)程的限速步驟[4]。目前,分離雙鏈PCR產(chǎn)物最經(jīng)典方法的是生物素-鏈親合素-磁珠法。該方法利用生物素與鏈親合素的結(jié)合特性,該方法包括:首先合成正向引物和反向引物,反向引物進(jìn)行生物素(Biotin)標(biāo)記;然后,PCR擴(kuò)增得到生物素標(biāo)記的dsDNA產(chǎn)物,將dsDNA濃縮純化后,與固定有鏈親合素(Streptavidin)的磁珠孵育,堿變性法打破dsDNA之間的氫鍵,使得Biotin-ssDNA與鏈親合素結(jié)合后固定在磁珠上,游離的另一條ssDNA則被分離出來(lái),作為后續(xù)篩選的亞文庫(kù)[5]。然而,最近的研究報(bào)道表明,該方法在堿變性后會(huì)打破鏈親合素與生物素之間的相互作用,使得Biotin-ssDNA脫落下來(lái),污染ssDNA亞文庫(kù),二者重新發(fā)生退火反應(yīng)形成雙鏈DNA[6]。另外,堿變性也會(huì)破壞鏈親合素與磁珠之間的共價(jià)鍵偶聯(lián),脫落的鏈親合素混入ssDNA文庫(kù),在后續(xù)與細(xì)胞孵育的過(guò)程中造成細(xì)胞的聚集,影響細(xì)胞的生存狀態(tài)[4,6]。
因此,有必要對(duì)傳統(tǒng)的生物素-鏈親合素-磁珠法進(jìn)行改良,提高雙鏈分離效率,降低鏈親合素及Biotin-ssDNA對(duì)ssDNA亞文庫(kù)的污染,改善篩選孵育過(guò)程中的細(xì)胞生存狀態(tài),提高cell-SELEX的成功率。
發(fā)明內(nèi)容
針對(duì)以上現(xiàn)有技術(shù)現(xiàn)狀,本發(fā)明提供了一種新的核酸適配子篩選過(guò)程中DNA雙鏈的分離方法,并進(jìn)一步提供一種改進(jìn)的核酸適配子的篩選方法,本發(fā)明通過(guò)在生物素-鏈親合素-磁珠法獲得ssDNA亞文庫(kù)后引入高分辨率瓊脂糖電泳,對(duì)ssDNA亞文庫(kù)進(jìn)行進(jìn)一步分離純化,純化后的亞文庫(kù)繼續(xù)用于后續(xù)cell-SELEX篩選,可以成功地篩選細(xì)胞特異性適配子。
本發(fā)明所述適配子篩選過(guò)程中DNA雙鏈的分離方法,包括如下步驟:
1)取由生物素-鏈親合素-磁珠法及堿變性法獲得的螢光素(FITC)-ssDNA亞文庫(kù)溶液用酸進(jìn)行中和;
2)將步驟1)所得中和后溶液進(jìn)行高分辨率瓊脂糖電泳;
3)分離ssDNA亞文庫(kù)及其中的污染序列,切取ssDNA亞文庫(kù)的目標(biāo)條帶,通過(guò)小分子量DNA純化回收試劑盒進(jìn)行回收,即得。
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