[發(fā)明專利]一種測定桿狀病毒滴度的方法無效
| 申請?zhí)枺?/td> | 201310309787.5 | 申請日: | 2013-07-23 |
| 公開(公告)號: | CN103364560A | 公開(公告)日: | 2013-10-23 |
| 發(fā)明(設(shè)計)人: | 李晶梅;朱薇;溫文生;漆世華;謝紅玲;靖志強;李建;秦紅剛;廖園園 | 申請(專利權(quán))人: | 武漢中博生物股份有限公司 |
| 主分類號: | G01N33/577 | 分類號: | G01N33/577;G01N33/569 |
| 代理公司: | 武漢科皓知識產(chǎn)權(quán)代理事務(wù)所(特殊普通合伙) 42222 | 代理人: | 張火春 |
| 地址: | 430070 湖北省*** | 國省代碼: | 湖北;42 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 一種 測定 桿狀病毒 方法 | ||
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技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及病毒滴度(含量)測定,具體涉及一種測定桿狀病毒滴度的方法。
背景技術(shù)
昆蟲桿狀病毒表達系統(tǒng)(Baculovirus?expression?vector?system,BEVS)是一種能夠高效表達外源基因的真核表達載體系統(tǒng)。以苜蓿銀紋夜蛾核多角體病毒(AcMNPV)為基本研究模型的BEVS是功用最多的、應(yīng)用最廣泛的真核細(xì)胞表達載體系統(tǒng)之一。以AcMNPV為基本研究模型的BEVS已經(jīng)充分商品化,包括多種商品化的載體、高效的轉(zhuǎn)染試劑、培養(yǎng)基,并且有成熟的構(gòu)建方法和成功案例。優(yōu)化最適病毒感染量(MOI)是提高BEVS外源基因表達量的重要手段,所以需要精確定量桿狀病毒滴度。常用的桿狀病毒滴度測定方法包括噬斑法、終點稀釋法、比色指示劑法、熒光定量PCR方法等,還有用于測定桿狀病毒滴度的商品化試劑盒,比如BACPAC商品化檢測試劑盒、Fastplas商品化檢測試劑盒。
1)噬斑法是測定病毒滴度最經(jīng)典的方法,接毒后在細(xì)胞上鋪瓊脂凝膠,培養(yǎng)5~8天,計數(shù)噬斑,通過噬斑數(shù)和稀釋度的換算,獲得病毒效價。噬斑法方法操作繁瑣,并且要求操作者有一定的操作經(jīng)驗。
2)終點稀釋法是以50%組織培養(yǎng)感染劑量(TCID50)表示,接毒后細(xì)胞培養(yǎng)5~8天,顯微鏡下觀察細(xì)胞病變(CPE),判定各孔是否感染。需要桿狀病毒感染細(xì)胞使細(xì)胞出現(xiàn)明顯的CPE,憑經(jīng)驗進行判斷,在細(xì)胞病變并不十分明顯的情況下有漏檢的可能,即主觀和經(jīng)驗因素對檢測結(jié)果的影響較大。
3)比色指示劑法是通過檢測細(xì)胞活性、間接判斷各孔是否感染。比色指示劑法實質(zhì)也是一種終點稀釋法,在結(jié)果判定步驟中引入比色指示劑操作,通過顏色變化判斷各孔細(xì)胞是否感染病毒。噻唑藍(MTT)是常用試劑之一,使用MTT作為比色指示劑的桿狀病毒滴度測定的方法俗稱MTT法。
4)熒光定量PCR方法通過定量病毒核酸而定量桿狀病毒,不能區(qū)分病毒死活。
5)BACPAC商品化檢測試劑盒是基于gp64蛋白和gp64單克隆抗體的檢測試劑盒,顯色系統(tǒng)為過氧化物酶和過氧化物酶底物。在噬斑法的基礎(chǔ)上進行改進,縮短了檢測時間;經(jīng)由免疫染色檢測感染細(xì)胞、辨識度高;顯微鏡下計數(shù)病灶,獲得病毒效價。
6)Fastplas商品化檢測試劑盒是基于gp64蛋白和gp64抗體的檢測試劑盒,顯色系統(tǒng)為β-gal和X-gal底物。
終點稀釋法測定病毒滴度俗稱TCID50測定,是使用最為廣泛的一種病毒含量測定方法。如前所述,將傳統(tǒng)的終點稀釋法用于桿狀病毒的測定有一定的不足。所謂的不足主要是指低濃度桿狀病毒感染細(xì)胞引起的細(xì)胞病變不明顯,結(jié)果判斷易受操作者的主觀因素影響。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的在于克服現(xiàn)有技術(shù)的缺點與不足,提供一種測定桿狀病毒滴度的方法。
本發(fā)明的目的通過下述技術(shù)方案實現(xiàn):
一種測定桿狀病毒滴度的方法,包括如下步驟:
(1)昆蟲細(xì)胞板的制備:將對數(shù)生長期的昆蟲細(xì)胞以2×104~4×104/0.1mL/孔的細(xì)胞密度鋪到細(xì)胞培養(yǎng)板中,置培養(yǎng)箱中培養(yǎng)使昆蟲細(xì)胞貼于孔底。
(2)接種桿狀病毒:將被檢的桿狀病毒接種到昆蟲細(xì)胞板中于培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。
(3)間接免疫熒光確定被感染的細(xì)胞孔數(shù):棄去細(xì)胞板內(nèi)培養(yǎng)基,固定,洗細(xì)胞板,加入gp64單抗孵育,洗細(xì)胞板,再加入羊抗鼠熒光抗體孵育,洗細(xì)胞板,熒光顯微鏡下觀察,細(xì)胞膜顯示亮綠色熒光判定該細(xì)胞所在孔為陽性孔。
(4)病毒滴度計算:計算病毒的TCID50。
步驟(1)中所述的昆蟲細(xì)胞優(yōu)選為Sf9細(xì)胞、Sf21細(xì)胞或High?Five細(xì)胞。
步驟(1)昆蟲細(xì)胞板的制備優(yōu)選為:將處于對數(shù)生長期的、懸浮培養(yǎng)中的昆蟲細(xì)胞,用培養(yǎng)基稀釋,稀釋后的細(xì)胞液以2×104~4×104/0.1mL/孔的細(xì)胞密度鋪到96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,置27℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng)1小時,昆蟲細(xì)胞貼于孔底,備用。
步驟(2)接種桿狀病毒優(yōu)選為:將被檢的桿狀病毒進行10倍系列稀釋,取適當(dāng)稀釋度的桿狀病毒液接種于96孔細(xì)胞培養(yǎng)板,0.1mL/孔,每個稀釋度6~8個重復(fù),置27℃培養(yǎng)箱中培養(yǎng),4~6天。
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