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[發明專利]柔紅霉素C-14羥化酶突變體及其基因工程菌的生產方法無效

專利信息
申請號: 201310086638.7 申請日: 2013-03-18
公開(公告)號: CN104059892A 公開(公告)日: 2014-09-24
發明(設計)人: 余宏;徐超波;王波;陳歡斌;張道生 申請(專利權)人: 江蘇禾昌生物科技有限公司
主分類號: C12N9/02 分類號: C12N9/02;C12N15/53;C12N1/21;C12N15/70;C12P19/56;C12R1/19
代理公司: 北京市振邦律師事務所 11389 代理人: 李朝輝
地址: 215600 江蘇省*** 國省代碼: 江蘇;32
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摘要:
搜索關鍵詞: 紅霉素 14 羥化酶 突變體 及其 基因工程 生產 方法
【權利要求書】:

1.一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體,其特征在于,柔紅霉素C-14羥化酶突變體的基因編碼的C-14羥化酶序列中,第121位的谷氨酸突變為纈氨酸。

2.根據權利要求1所述的一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體,其特征在于,柔紅霉素C-14羥化酶突變體的DNA序列中第361-363bp的GAG突變為GTG。

3.根據權利要求1所述的一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體,其特征在于,柔紅霉素C-14羥化酶突變體的重組表達質粒的基因編碼的C-14羥化酶序列中,第121位的谷氨酸突變為纈氨酸。

4.一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體的基因工程菌,其特征在于,所述基因工程菌是由柔紅霉素C-14羥化酶突變體的重組表達質粒轉化入宿主細胞而獲得。

5.根據權利要求4所述的一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體的基因工程菌,其特征在于,所述柔紅霉素C-14羥化酶突變體的基因工程菌的宿主細胞是大腸桿菌。

6.根據權利要求1所述的一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體,其特征在于,將所述柔紅霉素C-14羥化酶突變體的DNA序列克隆入宿主細胞,并將該宿主細胞的發酵菌體用于阿霉素的生產。

7.根據權利要求1、2、3、4、5或6任一所述的一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體,其特征在于,所述柔紅霉素C-14羥化酶突變體、其基因工程菌、其重組表達質粒及其編碼基因均可以應用在阿霉素、表阿霉素生產中。

8.一種柔紅霉素C-14羥化酶突變體基因工程菌的生產方法,包括以下步驟:

Q1:菌鏈霉菌C5的C-14羥化酶基因的基因克隆方法,包括以下分步驟:

Q11:PCR擴增:

Q111:設計一對引物:

5’-CTGGATCCATGGGCGGTGGGCGGTCC-3’和

5’-ATAAGCTTCACGGGGCCGGCTTCTCG-3’;

Q112:以鏈霉菌C5菌體為模板,設計PCR擴增引物,進行PCR擴增,PCR體系為:2μl PCR buffer,25mMol/L的MgCl21μl,2.5m Mol/L的dNTP1.5μl,取1μl上述Q111步驟中的兩條引物,牙簽挑取少量鏈霉菌C5菌體做為模板,2個單位的Taq酶,二甲基亞砜1μl,最后用無菌水補足至20μl;

Q113:在94℃環境中變性10min后,保持94℃環境中變性30s,然后在72℃環境中退火30s,保持72℃環境中延伸2min;

Q114:上述Q13步驟共進行30次循環,隨后在72℃環境中充分延伸10min;

Q12:含doxA基因的大腸桿菌質粒構建:

Q121:,先在1%的瓊脂糖凝膠中對Q1步驟PCR擴增結束后的物質進行使用電壓為100伏的核苷酸電泳;

Q122:割膠后,用膠回收試劑盒回收1400bp左右的DNA片段,將所獲得的DNA片段和載體pTrc99A用限制性內切酶BamHⅠ和HindⅢ進行雙酶切;

Q123:酶切產物再次進行電壓為100伏的核苷酸電泳,回收相應大小分別為900bp、4100bp左右的基因片段和載體,最后將載體和片段按1:3的比例混合后,加入1個單位的T4連接酶,16℃連接10小時以上;

Q2:對doxA基因的隨機突變

Q21:取引物對:

5’-AGCCTGAATCACTTCCGAATTCA-3’和

5’-TTCATTGGACCTAATACCGATCA-3’;

Q22:取易錯PCR反應體系50μl,包含物質為:20ng的Q1步驟完成后的含doxA基因的大腸桿菌質粒,各30pmol的Q21步驟中的一對引物,7mMol/LMgCl2,50mMol/L KCl,10mMol/L Tris-HCl,0.2mMol/L dGTP,0.2mMol/LdATP,1mMol/L dCTP,1mMol/L dTTP,0.05mMol/L MnC12,和5個酶活力單位的Taq酶;

Q23:設置PCR反應條件為:在94℃環境下變性10min后,再保持94℃變性30s,然后于72℃環境下退火30s,保持72℃環境中進行延伸2min;

Q24:將Q23步驟重復進行30次循環,然后在72℃環境下充分延伸10min;

Q25:使用1%的瓊脂糖凝膠,進行電壓為100伏的核苷酸電泳,割膠后,用膠回收試劑盒回收1400bp左右的DNA目的片段;

Q26:以Q25步驟中回收純化后的DNA片段作為引物,Q1步驟完成后的含doxA基因的大腸桿菌質粒,作為模版,進行PCR擴增,具體如下:

Q261:取反應體系物質配比為:20ng的DNA模板,此模板為Q1步驟完成后的重組大腸桿菌質粒;引物10μl,引物為Q25步驟中回收純化后的DNA片段;2.5mM dNTP8μl,和2個酶活力單位的KOD聚合酶;

Q262:設置PCR反應條件為:在95℃環境中變性8min后,在保持95℃環境中變性45s,然后在58℃環境中退火45s,隨后在68℃環境中延伸5.5min;

Q263:Q262步驟共重復進行25次循環,最后在保持68℃環境中充分延伸10min;

Q264:最終的PCR產物用DpnⅠ酶于37℃環境中,消化1小時后,經65℃環境中10min處理使DpnⅠ酶失活,即得到超過6×103個克隆的突變體庫;

Q3:突變體庫的篩選:

Q31:突變體轉化:通過電擊方法將步驟Q2完成后構建得到的突變體轉化到感受態細胞E.coli DH10B中;

Q32:將完成Q31步驟轉化后的感受態細胞E.coli DH10B細胞涂布于含氨芐抗生素的LB平板上,于37℃環境中進行培養;所述LB平板上另外還含有蛋白胨1%、酵母提取物0.5%、氯化鈉1%、瓊脂2%;

Q33:突變體篩選與鑒定:

Q331:挑取LB平板上長出的菌體轉接于液體LB試管中,于37℃培養環境中,置于220轉/分鐘的搖床中過夜培養,第二天轉接于裝量50ml LB培養基的250ml搖瓶中,3小時后對菌體進行1mMIPTG誘導,繼續培養18h后,4000轉/分鐘的速率離心15分鐘后,收集菌體;

Q332:對收集的菌體進行柔紅霉素的轉化:2ml的0.1M磷酸緩沖液中溶解0.2g柔紅霉素,加入等量的上述菌體,37℃水浴中、以200轉/分鐘的速率進行震蕩,持續30分鐘之后,測定鹽酸表阿霉素的增加量;

Q34:從完成上述所有步驟的突變體基因工程菌庫中,篩選獲得酶活力得到提高的突變體基因工程菌。

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