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[發(fā)明專利]臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞分化為神經(jīng)干細(xì)胞的誘導(dǎo)方法無效

專利信息
申請(qǐng)?zhí)枺?/td> 201210504988.6 申請(qǐng)日: 2012-11-30
公開(公告)號(hào): CN103031275A 公開(公告)日: 2013-04-10
發(fā)明(設(shè)計(jì))人: 陸華 申請(qǐng)(專利權(quán))人: 陸華
主分類號(hào): C12N5/0797 分類號(hào): C12N5/0797;C12N5/0775
代理公司: 常州市維益專利事務(wù)所 32211 代理人: 何學(xué)成
地址: 214041 江蘇*** 國(guó)省代碼: 江蘇;32
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摘要:
搜索關(guān)鍵詞: 臍帶 間充質(zhì) 干細(xì)胞 化為 神經(jīng) 誘導(dǎo) 方法
【說明書】:

技術(shù)領(lǐng)域

發(fā)明涉及生物技術(shù)領(lǐng)域,特別涉及一種應(yīng)用全反式維甲酸聯(lián)合細(xì)胞因子誘導(dǎo)臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞分化為神經(jīng)干細(xì)胞的方法。

背景技術(shù)

目前,神經(jīng)干細(xì)胞主要從胚胎干細(xì)胞誘導(dǎo)或是直接從發(fā)育中和成年哺乳動(dòng)物的中樞神經(jīng)系統(tǒng)中分離培養(yǎng)獲得。但是倫理學(xué)、安全性問題以及細(xì)胞來源和數(shù)量的有限,在一定程度上限制了神經(jīng)干細(xì)胞的移植應(yīng)用。因此,很有必要尋找其它能夠獲得神經(jīng)干細(xì)胞的途徑來克服這些限制。中胚層來源的間充質(zhì)干細(xì)胞向外胚層來源的神經(jīng)干細(xì)胞轉(zhuǎn)化的研究正處于起步階段,臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞(UC-MSCs)來自新生兒,取材方便、易于體外擴(kuò)增、安全無病毒感染風(fēng)險(xiǎn)以及不受倫理和法律限制等優(yōu)勢(shì),表達(dá)胚胎干細(xì)胞特異性基因、端粒末端轉(zhuǎn)移酶SSEA4和TAR-1-60等原始干細(xì)胞表面標(biāo)志,如能將UC-MSCs誘導(dǎo)為神經(jīng)干細(xì)胞后應(yīng)用將規(guī)避上述不足之處。全反式維甲酸是維生素A的衍生物,能夠明顯增加神經(jīng)細(xì)胞的數(shù)量并呈劑量依賴效應(yīng),能調(diào)節(jié)表皮生長(zhǎng)因子(EGF)反應(yīng)的神經(jīng)干細(xì)胞分化,增加神經(jīng)元細(xì)胞和星形膠質(zhì)細(xì)胞的合成。將其與神經(jīng)營(yíng)養(yǎng)因子和細(xì)胞因子聯(lián)合用于誘導(dǎo)胚胎干細(xì)胞向神經(jīng)干細(xì)胞方向分化,同體內(nèi)發(fā)育過程相似,且可以部分模擬體內(nèi)環(huán)境,可以誘導(dǎo)UC-MSCs轉(zhuǎn)化為神經(jīng)干細(xì)胞,使其有可能成為今后臨床應(yīng)用更為理想的種子細(xì)胞。

發(fā)明內(nèi)容

為使UC-MSCs有效轉(zhuǎn)化為神經(jīng)干細(xì)胞,本發(fā)明提供一種應(yīng)用全反式維甲酸(ATRA)聯(lián)合堿性成纖維細(xì)胞生長(zhǎng)因子(bFGF)、表皮生長(zhǎng)因子(EGF)誘導(dǎo)臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞(UC-MSCs)分化為神經(jīng)干細(xì)胞的方法,UC-MSCs經(jīng)誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化為神經(jīng)干細(xì)胞,經(jīng)分裂增殖多次傳代后仍然保持較強(qiáng)的活力,實(shí)現(xiàn)了間充質(zhì)細(xì)胞跨胚層分化為非間充質(zhì)細(xì)胞的能力。

具體的,本發(fā)明的臍帶間充質(zhì)干細(xì)胞分化為神經(jīng)干細(xì)胞的誘導(dǎo)方法包括如下步驟:UC-MSCs的分離、原代培養(yǎng),UC-MSCs的傳代培養(yǎng)與擴(kuò)增,UC-MSCs體外誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化為神經(jīng)干細(xì)胞,神經(jīng)干細(xì)胞的分化培養(yǎng)以及免疫熒光法檢測(cè)。

其中,所述的UC-MSCs的分離、原代培養(yǎng)的步驟包括:無菌條件下,將健康胎兒的臍帶用含有雙抗和兩性霉素的D-Hanks液充分沖洗,沖去臍靜脈及動(dòng)脈內(nèi)的殘存積血;撕掉臍帶表面的羊膜得到間充質(zhì)組織,用組織剪將臍帶組織剪碎成1mm3大小的組織塊,將組織塊移至內(nèi)含一磁力攪拌子的玻璃瓶中,加入膠原酶37℃下持續(xù)磁力攪拌消化30分鐘;向膠原酶-組織塊消化體系內(nèi)加入終濃度為0.125%的胰酶,在37℃環(huán)境中繼續(xù)磁力攪拌消化30分鐘后,加入10%體積的FBS終止消化;將收集的細(xì)胞用PBS吹打成均勻懸液,1500轉(zhuǎn)/分鐘旋轉(zhuǎn)15分鐘洗滌后收集細(xì)胞;用含20%FBS,4ng/ml表皮生長(zhǎng)因子(EGF)的DMEM/F12完全培養(yǎng)液重懸消化分離所得細(xì)胞,吹打均勻,計(jì)數(shù)細(xì)胞;調(diào)整細(xì)胞濃度為1.0×106細(xì)胞/ml,接種于包被后的細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,置于37℃,5%CO2,飽和濕度的細(xì)胞培養(yǎng)箱中培養(yǎng);培養(yǎng)4-5天后全量換液,棄去未貼壁細(xì)胞,以后每3-4天半量換液一次;細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)至80-90%匯合時(shí),以0.25%胰蛋白酶-0.01%EDTA消化,得到原代細(xì)胞。

所述UC-MSCs的傳代培養(yǎng)與擴(kuò)增步驟包括:觀察原代培養(yǎng)細(xì)胞貼壁生長(zhǎng)至80-90%匯合時(shí),吸棄培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)原有培養(yǎng)液,吸取PBS緩沖液加入培養(yǎng)瓶?jī)?nèi)洗滌,棄去洗液;加入胰蛋白酶-EDTA消化液,浸漫覆蓋瓶底;加入FBS中止胰酶消化;加入PBS反復(fù)吹打沖洗,在室溫下900轉(zhuǎn)/分鐘離心10分鐘;棄去上清液,加入DMEM/F12重懸細(xì)胞,按1∶2-1∶3比例在細(xì)胞培養(yǎng)箱中傳代培養(yǎng),計(jì)為第1代UC-MSC;待細(xì)胞生長(zhǎng)至80-90%匯合時(shí),重復(fù)上述操作進(jìn)行多代細(xì)胞培養(yǎng)擴(kuò)增。

所述UC-MSCs體外誘導(dǎo)轉(zhuǎn)化為神經(jīng)干細(xì)胞步驟包括:取2-3代培養(yǎng)細(xì)胞,分別接種于6孔板,生長(zhǎng)密度達(dá)到60%時(shí),換成全反式維甲酸聯(lián)合細(xì)胞因子的誘導(dǎo)培養(yǎng)基,在37℃、5%CO2、飽和濕度靜置培養(yǎng);待培養(yǎng)出現(xiàn)大量懸浮克隆球后進(jìn)行傳代培養(yǎng);無菌條件下,在倒置顯微鏡下用玻璃微針將其中的大于200μm的大克隆球切成數(shù)塊,繼續(xù)培養(yǎng);7~10天傳代1次;傳代后的細(xì)胞再無血清誘導(dǎo)培養(yǎng)基培養(yǎng)體系中繼續(xù)培養(yǎng)。

所述神經(jīng)干細(xì)胞的分化培養(yǎng)步驟包括:將以上獲得的、來自單細(xì)胞的克隆球經(jīng)胰酶消化后,種植于預(yù)先用多聚賴氨酸包被的小培養(yǎng)皿中,用DMEM/F12+5%Fcs+EGF+bFGF培養(yǎng)基和經(jīng)過濾滅菌后的新鮮成人腦脊液中進(jìn)行分化培養(yǎng)。

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