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[發(fā)明專利]CryIAc蛋白標準物質(zhì)定值的方法有效

專利信息
申請?zhí)枺?/td> 201110163446.2 申請日: 2011-06-17
公開(公告)號: CN102353726A 公開(公告)日: 2012-02-15
發(fā)明(設(shè)計)人: 宋德偉;劉思謙;武利慶;畢佳明;王晶;楊彬 申請(專利權(quán))人: 中國計量科學研究院
主分類號: G01N30/02 分類號: G01N30/02;G01N30/06
代理公司: 北京雙收知識產(chǎn)權(quán)代理有限公司 11241 代理人: 盧新;解政文
地址: 100013 *** 國省代碼: 北京;11
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摘要:
搜索關(guān)鍵詞: cryiac 蛋白 標準 物質(zhì) 方法
【說明書】:

技術(shù)領(lǐng)域

發(fā)明涉及一種標準物質(zhì)的定值方法,尤其是涉及一種殺蟲晶體蛋白CryIAc標準物質(zhì)定值的方法。

背景技術(shù)

對通過均勻性、穩(wěn)定性檢驗合格樣料的特性值進行測量,在標準物質(zhì)技術(shù)領(lǐng)域稱為表征化(原文為characterize,即對材料特性進行測量);由計量權(quán)威部門對表征化獲得的樣料特性的量值進行計量學溯源性(以下簡稱溯源性)確認和相應(yīng)測量不確定度評定合理性確認,在標準物質(zhì)技術(shù)領(lǐng)域稱為定值(原文為certify,即對測量獲得的結(jié)果進行認證確認,在其它技術(shù)領(lǐng)域一般稱為認證)。因此,對有證標準物質(zhì)的定值,實際上應(yīng)分為兩步:首先是對經(jīng)過均勻性、穩(wěn)定性檢驗合格的樣料特性值進行測量,也就是表征化;然后是對測量結(jié)果的溯源性和測量不確定度評定的合理性進行有效性確認。

蘇云金芽胞桿菌(Bacillus?thuringiensis,簡稱Bt)是一種革蘭氏陽性菌,廣泛存在于土壤、塵埃、水域、沙漠、植物、昆蟲尸體中(賈士榮等,2001)。1901年,日本學者石渡從染病的家蠶體液中首次分離出Bt菌,并證明部分Bt對鱗翅目昆蟲有殺蟲活性。1915年,Berliner注意到Bt在芽胞形成過程中,其一端出現(xiàn)小的包含物,但不知殺蟲活性與此有關(guān)。二十世紀50年代,人們才發(fā)現(xiàn)Bt菌的殺蟲活性與伴胞晶體有關(guān)(Hannay,1953),并證實這種伴胞晶體由蛋白質(zhì)組成(Hannay?and?Fitz-James,1955)。這種蛋白通常被稱作δ-內(nèi)毒素(δ-endotoxins)或殺蟲晶體蛋白(insecticidal?crystal?protein,ICP)。1989年Hofte和Whiteley根據(jù)晶體蛋白的氨基酸序列和殺蟲譜的不同,將已經(jīng)發(fā)表的42種晶體蛋白分為5群14亞類。其中具有溶血溶細胞作用的27kDa晶體蛋白基因被命名為Cyt基因,其他只有殺蟲活性的13亞類命名為狹義的晶體蛋白基因,即Cry基因。Cry基因可劃分四群,即CryI為鱗翅目特異性,Cry?II為鱗翅目和雙翅目特異性,CryIII為鞘翅目特異性,CryIV雙翅目特異性。CryI是研究的最多的一類Bt殺蟲晶體蛋白,目前常見的轉(zhuǎn)Bt基因是CryIA(b)、(c),Cry9c。BT晶體蛋白具有高特異的殺蟲活性,是近年來應(yīng)用最為廣泛的生物殺蟲劑。在實際檢測工作中,經(jīng)常需要對待檢測轉(zhuǎn)基因作物進行CryIAc蛋白定性和定量檢測,但是對于其標準物質(zhì)定值是否準確的研究現(xiàn)在還很少。

發(fā)明內(nèi)容

本發(fā)明所解決的技術(shù)問題是填補上述技術(shù)空白,提供一種CryIAc蛋白標準物質(zhì)定值的方法,具有良好的準確性、可靠性和追溯性。

上述定值方法,包括以下步驟:

(1)合成兩條特異性肽段:LIGNYTDYAVR、IVAQLGQGVYR用于進行CryIAc蛋白定量;

(2)同時使用全氘標記的亮氨基合成對應(yīng)的兩條同位素標記肽段;

(3)以亮氨酸、異亮氨酸、纈氨酸、脯氨酸和/或苯丙氨酸標準物質(zhì)為標準,以同位素標記亮氨酸、異亮氨酸、纈氨酸、脯氨酸和/或苯丙氨酸為內(nèi)標,采用同位素稀釋質(zhì)譜法對合成的兩條標準肽段進行準確定量;

(4)按400μL溶液中所含CryIAc蛋白質(zhì)量,根據(jù)兩條肽段的純度計算酶切后所得兩條目標肽段的質(zhì)量,配制相應(yīng)濃度標準肽段及同位素內(nèi)標肽段;

(5)準確稱量400μL?CryIAc蛋白溶液,加入并稱量相應(yīng)體積的同位素內(nèi)標溶液;使酶切后所得目標肽段與內(nèi)標肽段摩爾比為1∶1;

(6)離心干燥上述已加入內(nèi)標的蛋白溶液,加入100μL的8M尿素溶液對蛋白進行變性處理;10min后加入2μL?1M的二硫蘇糖醇(DTT)溶液在60攝氏度水浴中加熱60min;然后加入2μL?1M的碘乙酰胺(IAA),在暗處反應(yīng)40min;加入6μL?1M的二硫蘇糖醇還原多余的碘乙酰胺;用100mM的碳酸氫胺溶液稀釋尿素至1M以下,加入2μL?0.5mg/mL的胰蛋白酶(Trypsin)溶液進行酶切,每24小時補充2μL的Trypsin;酶切84小時后采用同位素稀釋質(zhì)譜法對兩條肽段進行準確定量;

(7)根據(jù)質(zhì)譜所得酶切后肽段與同位素肽段的比例配制標準肽段與內(nèi)標肽段比例的標準曲線;計算溶液中肽段含量,根據(jù)蛋白的分子量計算每400μL溶液中CryIAc蛋白的濃度作為標準物質(zhì)的定值結(jié)果。

其中本發(fā)明中使用的CryIAc標準物質(zhì)制備過程:

(1)配制濃度為0.1%的氨水溶液,用于溶解經(jīng)過純化的CryIAc。

(2)配制濃度為50μg/g?CryIAc溶液。

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