[發明專利]可溶性截短的人TRAIL活性蛋白的制備方法無效
| 申請號: | 201010243089.6 | 申請日: | 2010-07-30 |
| 公開(公告)號: | CN102021173A | 公開(公告)日: | 2011-04-20 |
| 發明(設計)人: | 王行國;葉青;陳凡 | 申請(專利權)人: | 湖北大學 |
| 主分類號: | C12N15/12 | 分類號: | C12N15/12;C12N15/70;C07K14/705;C07K1/36;C07K1/30;C07K1/20;C07K1/18 |
| 代理公司: | 武漢金堂專利事務所 42212 | 代理人: | 丁齊旭 |
| 地址: | 430062 湖*** | 國省代碼: | 湖北;42 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 可溶性 trail 活性 蛋白 制備 方法 | ||
1.一種可溶性截短的人TRAIL活性蛋白的制備方法,其特征在于包括以下步驟:
A、人工合成編碼截短的人TRAIL蛋白的DNA;根據Genebank發表的人TRAIL蛋白可溶性蛋白的氨基酸序列,按細菌遺傳密碼的偏好性設計24種寡聚DNA單鏈片段,人工合成全部DNA單鏈片段;
B、三輪PCR合成完整的雙鏈DNA片段;將24種DNA單鏈片段分成2-3組,每組50μl的體系中分別加入濃度為10μM的每種寡聚DNA單鏈片段1.5μl、10×PCR反應緩沖液5μl、2.5mM?dNTPs?4μl、Taq?DNA聚合酶0.4μl,并補加ddH2O至50μl,進行第一輪PCR,共擴增20個循環,回收PCR產物;每組取2μl第一輪回收的PCR產物,加入10×PCR反應緩沖液5μl、2.5mM?dNTPs?4μl、Taq?DNA聚合酶0.2μl,并補加ddH2O至50μl進行第二輪PCR,共擴增30個循環,回收PCR產物;每組取2.5μl第二輪回收的PCR產物,加入10×PCR反應緩沖液5μl、2.5mM?dNTPs?4μl、帶限制性內切酶位點的5’-和3’-端引物各1.5μl、Taq?DNA聚合酶0.4μl,并補加ddH2O至50μl進行第三輪PCR,共擴增20個循環,回收PCR產物,得到全長完整的雙鏈DNA片段;
C、利用T-載擴增,將全長DNA片段克隆并轉化:將0.5μl回收的第三輪PCR產物與2μl?T-載連接緩沖液、0.2μl?pMD18-T載體DNA混合,加ddH2O至5μl,混勻后16℃保溫4小時,取3μl連接反應液,按常規CaCl2法轉化E.coliTop10,用含有50μg/ml氨芐青霉素的LB平板37℃培養12小時篩選陽性菌落,將單個陽性菌落送商業公司檢測插入的DNA序列正確性;
D、在大腸桿菌中高效低溫表達截短的人TRAIL蛋白
(1)將測序正確的陽性菌落接種至5ml含有50μg/ml氨芐青霉素的LB培養基中37℃培養12小時,并用質粒DNA抽提試劑盒抽提T-載重組質粒DNA,分別將20μl?T-載重組質粒和pET23a表達載體DNA與5μl?10×H緩沖液、2μlNdeI、2μlXhoI和21μl?ddH2O混合,37℃酶切反應4小時,用1%瓊脂糖凝膠電泳分離限制性內切酶消化樣品,在紫外燈下用刀片切出目的DNA片段,然后按DNA片段回收試劑盒的方法回收目的DNA片段,然后在25μl的體系中,加入2.5μl?10×T4DNA連接酶反應緩沖液,并按1∶5的比例加入限制性內切酶消化過的pET23a質粒DNA和編碼截短人TRAIL蛋白的DNA片段,再加入1μlT4DNA連接酶,16℃水浴4-12小時形成重組表達質粒;
(2)利用常規的CaCl2法制備E.coli?BL21(DE3)感受態細胞,然后將5-10μl上述連接反應混合物與100μl感受態細胞混合,冰浴30分鐘,42℃熱休克1.5分鐘后立即置冰上5分鐘,加入900μl新鮮LB培養基后在37℃搖床上培養45分鐘,搖床轉速為150rpm,然后將細菌涂布在含100μg/ml氨芐青霉素的LB平板上,37℃培養12小時,平板上長出的單個菌落即為陽性轉化子;
(3)將單個的陽性轉化子接種到5ml含50μg/ml氨芐青霉素的LB培養基中37℃培養12小時,活化后菌液按1∶100接入在含有50μg/ml氨芐青霉素的LB培養基的搖瓶中17℃搖動培養,搖床轉速為250rpm,當OD600值達到0.6時加入終濃度為0.5mM的IPTG誘導8-20小時,細胞經4500rpm離心15分鐘后收集并懸浮在含有1mM?DTT和5%甘油的50mM?TrisHCl緩沖液中(pH7.4),超聲波破碎,12000rpm離心收集上清液;
E、截短人TRAIL蛋白的三步法純化
在50ml上清粗酶液中加入硫酸銨至終濃度40%,4℃放置2小時,12,000rpm離心15分鐘,去除沉淀,在離心后的上清液中加入硫酸銨至終濃度60%,4℃放置4-12小時,12,000rpm離心15分鐘,移去上清液,用20ml?50mM?TrisHCl(pH7.5)懸浮沉淀物,并用50mM?TrisHCl(pH7.5)4℃透析除去硫酸銨;
然后將樣品上樣至50mM?TrisHCl(pH7.5)平衡的CM-Sepharouse陽離子層析柱并用0-0.8M?NaCl進行梯度洗脫,流速為2ml/min,自動收集洗脫流出液,蛋白經10%SDS-PAGE電泳鑒定;
在含有截短人TRAIL蛋白的蛋白溶液中加入40%硫酸銨后,直接上樣Butyl-Sepharose層析柱(平衡用緩沖液為40%(NH4)2SO4-50mM?TrisHCl(pH7.5)),用40%-0硫酸銨進行梯度洗脫,流速為2ml/min,自動收集洗脫流出液,10%SDS-PAGE電泳鑒定蛋白純度。?
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