[發明專利]乳酸菌單質粒Nisin誘導表達載體的構建及使用方法無效
| 申請號: | 200810051043.7 | 申請日: | 2008-08-01 |
| 公開(公告)號: | CN101638665A | 公開(公告)日: | 2010-02-03 |
| 發明(設計)人: | 王春鳳;郝鳳奇 | 申請(專利權)人: | 王春鳳;郝鳳奇 |
| 主分類號: | C12N15/74 | 分類號: | C12N15/74;C12Q1/02;G01N21/64 |
| 代理公司: | 吉林長春新紀元專利代理有限責任公司 | 代理人: | 紀 尚 |
| 地址: | 130118吉林省長春市新*** | 國省代碼: | 吉林;22 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 乳酸菌 質粒 nisin 誘導 表達 載體 構建 使用方法 | ||
1.乳酸菌單質粒Nisin誘導表達載體,它是由下述方法制備的:
a.雙組分調控元件nisRK基因的獲得及鑒定
(1)產Nisin乳酸乳球菌染色體DNA的制備
將-70℃凍存的產Nisin乳酸乳球菌接種于新鮮的MRS液體培養基中復蘇,復蘇后菌液涂布MRS培養 平板上,37℃恒溫厭氧培養過夜后挑取單個菌落接種于新鮮MRS液體培養基中進行培養,待菌體OD600值 為0.6~0.8時,收集菌體,提取染色體DNA,-20℃保存備用;
(2)引物的設計與合成
根據GenBank登錄的nisRK基因序列GI:473019,采用Primer?5.0分子生物學軟件進行引物設計,上 下游引物分別加入Xba?I和Kpn?I酶切位點,每條引物全長27bp,由寶生物工程(大連)有限公司合成;引 物序列如下:
上游引物P1:GGG?TCT?AGA?GGA?GGT?AAA?GTG?GTG?TAT;
下游引物P2:GCG?GGT?ACC?TTA?CTT?TTT?TAT?TTT?TAG;
(3)nisRK基因PCR擴增、回收、與pGEM-T連接及轉化
以產Nisin乳酸乳球菌染色體DNA為模板,PCR獲得目的基因;采用凝膠回收試劑盒對PCR產物進行回 收;回收產物與克隆載體pGEM-T通過T4?DNA連接酶進行連接;連接產物轉化E.coli?JM109感受態細胞中, 在含有200μg/mL氨芐青霉素的培養基中篩選陽性克隆子;
(4)nisRK基因的鑒定
挑取陽性菌落接種于200μg/mL氨芐青霉素的LB培養基中,37℃搖床培養過夜;次日收集菌體,小量 制備重組陽性質粒pGEM-T::nisRK;并對其進行PCR鑒定和1Xba?I/Kpn?I雙酶切鑒定;
b.乳酸菌單質粒Nisin誘導表達載體pW425N的構建
(1)nisRK基因和基礎載體pW425et的回收、連接及鑒定
將pGEM-T::nisRK和基礎質粒pW425et分別用Xba?I/Kpn?I雙酶切后,回收目的片段,采用T4DNA連接 酶進行連接;連接產物轉化E.coli?X13感受態細胞中,在含有200μg/mL紅霉素的LB培養基中篩選陽性克隆 子;小量制備重組質粒后,進行PCR鑒定和Xba?I/Kpn?I雙酶切鑒定;結果表明,成功組建了重組質粒 pW425et::nisRK;
(2)誘導型啟動子nisA基因的獲得、鑒定及pW425N的構建
根據GenBank登錄的nisA序列,采用Primer?5.0分子生物學軟件進行引物設計,上下游引物分別加入 EcoR?I和Sac?I酶切位點,每條引物全長24bp,由寶生物工程(大連)有限公司合成;引物序列如下:
上游引物P1:GGG?GAA?TTC?ATT?AAA?TTC?TGA?AGT
下游引物P2:GGG?GAG?CTC?TTA?TTT?GCT?TAC?GTG
以產Nisin乳酸乳球菌染色體DNA為模板,PCR獲得目的基因;采用凝膠回收試劑盒對PCR產物進行回 收;回收產物與pW425et::nisRK分別用EcoR?I/Sac?I進行雙酶切,將回收目的產物采用T4DNA連接酶進行 連接,再轉化E.coli?X13感受態細胞中,在含有200μg/mL紅霉素的LB培養基中篩選陽性克隆子;小量制備 重組質粒,對其進行PCR鑒定和EcoR?I/Sac?I雙酶切鑒定;結果表明,獲得的誘導型啟動子nisA與已知序 列同源性高達100%,并用其成功替換了原組成型啟動子P32,構建了乳酸菌單質粒Nisin誘導表達載體 pW425N。
2.權利要求1所述的乳酸菌單質粒Nisin誘導表達載體的使用方法,其方法是:
a、綠色熒光蛋白gfp基因的獲得及鑒定
根據GenBank登錄的綠色熒光蛋白gfp基因開放閱讀框序列GI:1674491,采用Primer?5.0分子生物學軟件 進行引物設計,上下游引物分別加入Sac?II和Cla?I酶切位點,每條引物全長24bp,由寶生物工程(大連)有 限公司合成;引物序列如下:
上游引物P1:GTT?CCG?CGG?ATG?ACC?ATG?ATT?ACG
下游引物P2:GGG?ATC?GAT?TTA?TTT?GTA?GAG?CTC
以含有綠色熒光蛋白gfp基因的質粒為模板,PCR獲得目的基因;采用凝膠回收試劑盒對PCR產物進行 回收;回收產物與克隆載體pMD18-T連接后轉化E.coli?JM109感受態細胞中,在含有200μg/mL氨芐青霉素 的LB培養基中篩選陽性克隆子;小量制備重組質粒pMD18-T::gfp,并對其進行PCR鑒定、Sac?II/Cla?I雙酶 切鑒定和測序鑒定;結果表明,成功獲得了綠色熒光蛋白gfp基因,與已知序列同源性高達100%;
b、重組表達載體pW425N::gfp的構建及鑒定
將pMD18-T::gfp和表達載體pW425N分別用Sac?II/Cla?I進行雙酶切,回收目的片段,采用T4DNA連接 酶進行連接,連接產物電轉化分離自豬腸道的乳酸桿菌感受態細胞中,在含有400μg/mL紅霉素的MRS培 養基中篩選陽性克隆子;小量制備重組表達載體pW425N::gfp并對其進行PCR鑒定和Sac?II/Cla?I雙酶切鑒 定;
c、Nisin誘導表達載體對綠色熒光蛋白誘導表達功能的測定
(1)確定豬源乳酸桿菌對Nisin耐受濃度RC和最小抑菌濃度MIC
挑取豬源乳酸桿菌單個菌落接種于新鮮含400μg/mL紅霉素的MRS培養基中,37℃恒溫厭氧培養至 菌液OD600值為0.6~0.8時,取菌液按1∶100比例分別接種于含有不同濃度Nisin,10ng/mL、20ng/mL、 30ng/mL、40ng/mL、50ng/mL、60ng/mL的MRS培養基中;37℃恒溫厭氧培養24h后測定菌液OD600值,以確定重組乳酸桿菌對Nisin的耐受濃度和最小抑菌濃度;
(2)確定添加Nisin對gfp基因誘導表達時程
將陽性重組菌接種于50mL的MRS培養基中,37℃恒溫厭氧培養至菌液OD600值為0.6~0.8時,添加 10ng/mL?Nisin進行誘導表達;菌液OD600值為0.6~0.8時,記為誘導0h,添加Nisin后,每隔1h取菌液 2mL,連取7h;最后將上述收集的菌液用MRS調OD600值為0.6~0.8,4℃,4000r/min,離心10min, 沉淀用無菌生理鹽水清洗三次,最后重懸于3mL生理鹽水中;采用熒光分光光度計在激發光460nm波長 下測定樣品509nm波長下的相對熒光強度,確定最適誘導表達時間為3h;
(3)確定gfp基因誘導表達所需Nisin的最佳濃度
將陽性重組菌接種于50mL的MRS培養基中,37℃恒溫厭氧培養至菌液OD600值為0.6~0.8時,向 培養基中添加Nisin,使終濃度分別為10ng/mL、15ng/mL、20ng/mL、25ng/mL、30ng/mL、35ng/mL、 40ng/mL、45ng/mL、50ng/mL、55ng/mL、60ng/mL;誘導表達后,分別取不同組樣品3mL,將收集 的菌液用MRS調OD600值為0.6~0.8,4℃,4000r/min,離心10min,沉淀用無菌生理鹽水清洗三次, 最后重懸于3mL生理鹽水中;采用熒光分光光度計在激發光460nm波長下測定樣品509nm波長下的相 對熒光強度,確定最佳誘導表達所需的Nisin濃度為30ng/mL;
(4)SDS-PAGE電泳分析
將陽性重組乳酸桿菌接種于50mL的MRS培養基中,37℃培養至菌液OD600值為0.6~0.8時添加Nisin誘 導目的基因表達;菌液OD600值為0.6~0.8時,記為誘導0h,添加Nisin后,每隔1h取菌液1.5mL,連取6h; 最后將上述收集的菌液調OD600值為0.6~0.8,4℃,12000r/min,離心5min后棄上清,加入50μL一餾水、 45μL上樣緩沖液、5μL二硫蘇糖醇,沸水煮10min后上樣進行SDS-PAGE電泳;電泳結束后,采用考馬斯 亮藍進行染色,經成像儀觀察后,成功獲得了27kDa的綠色熒光蛋白,與預期大小相符;
d、重組乳酸桿菌穩定性檢測
將重組乳酸桿菌在含有400μg/mL紅霉素的MRS培養基中傳至50代,提取重組質粒pW425N::gfp,對 其進行酶切鑒定和PCR鑒定;同時,取菌液100μL,10倍稀釋后分別作革蘭氏染色和熒光顯微鏡觀察;結 果表明,所構建的載體在傳至50代后仍能在乳酸菌中穩定地存在并表達綠色熒光蛋白。
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