[發明專利]一種從無花果樹樹葉中提取超氧化物歧化酶的方法無效
| 申請號: | 200710055710.4 | 申請日: | 2007-05-31 |
| 公開(公告)號: | CN101096663A | 公開(公告)日: | 2008-01-02 |
| 發明(設計)人: | 王曉平;王擁軍;郝東云;張同海;張今;張雷;曲和之;黃露;杜珊珊 | 申請(專利權)人: | 王曉平;王擁軍 |
| 主分類號: | C12N9/08 | 分類號: | C12N9/08 |
| 代理公司: | 吉林長春新紀元專利代理有限責任公司 | 代理人: | 魏征驥 |
| 地址: | 130021吉*** | 國省代碼: | 吉林;22 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 一種 無花果 樹葉 提取 超氧化物歧化酶 方法 | ||
技術領域
本發明屬于生物技術領域,特別涉及利用生物技術從無花果樹樹葉中提取超氧化物歧化酶(SOD)。
背景技術
無花果:英文名Fig,學名Ficus?carica?L。為桑科(Moraceae)榕屬(Ficus?L.)多年生亞熱帶落葉果樹,小喬木或灌木。又稱壽果、明日果、蜜果,原產于地中海沿岸的西亞沙特阿拉伯、也門一帶沙漠綠洲里,是人類最早栽培的果樹之一。無花果葉含有黃酮、果膠、樹脂、β-谷甾醇、β-香樹脂醇、蛇麻脂醇、棕櫚酸、纈草酸、愈瘡木酚、廿八烷、蕓香苷、苯甲醛、呋喃香豆素,補骨脂素,佛手柑內酯,其中某些被認為是抗癌活性成分。
超氧化物歧化酶(Superoxide?dismutase,SOD,EC?1.15.11)是一種金屬酶,分子量為31000-33000,由兩個亞基組成。SOD廣泛存在于生物細胞內和植物葉綠體基質中。
1938年Mann和Keilin首次從牛血紅細胞中分離出一種藍色的含銅蛋白(Hemocuprein);1969年McCord和Fridovich發現這種含銅蛋白能催化超氧陰離子自由基(O2-·)發生歧化反應,將其命名為超氧化物歧化酶(Superoxide?dismutase,SOD)。SOD是生物體內超氧自由基的專一清除劑,能清除人體內產生的超氧陰離子自由基(O2-·),消除活性氧毒性,在生物體內自由基產生與消除的動態平衡中起著重要作用,是生物體內一種重要的防御酶。由于具有巨大的藥用價值和廣闊的應用前景,多年來對SOD的研究與應用一直受到科學界和企業界的極大關注。
SOD的基礎和應用研究進展十分迅速,并已進行了臨床試驗。其臨床應用主要集中在抗炎癥、抗腫瘤、抗衰老及皮膚病、心血管病等疾病的預防和治療。隨著研究工作的不斷深入,SOD的應用也越來越廣泛,國外已有專利生產SOD消炎藥、含SOD的化妝品、抗輻射SOD膠囊、治療局部缺血癥SOD藥劑等。美國、日本及西歐一些國家開發的重組人SOD藥物,已經進行入II期和III期臨床研究。我國也開展了基因重組SOD的研究。
目前從植物中提取SOD的工藝流程:植物組織或器官→組織破碎,鹽溶液提取→離心收集上清液→硫酸銨分級沉淀→收集沉淀→水或緩沖液溶解→丙酮沉淀→pH7.8磷酸鉀緩沖液溶解→離心除去不溶雜蛋白→透析→Biogel?P-60柱層析→收集活力組分→硫酸銨沉淀→pH7.8磷酸鉀緩沖液溶解,透析→DE-32柱層析→收集活力組分→DE-32柱層析→收集活力組分,濃縮得到SOD成品
相關資料表明,國內外有關SOD分離提取工藝中均采用乙醇、丙酮有機溶劑。若大規摸生產SOD,需回收乙醇、丙酮等有機溶劑,不僅浪費人力物力,而且有機溶劑易燃易爆,用于工業生產將有重大的安全隱患。
發明內容
本發明提供一種從無花果樹樹葉中提取超氧化物歧化酶的方法,從而可解決現有生產方法中采用有機溶劑提取導致生產成本高,需回收乙醇、丙酮等有機溶劑,浪費人力物力,及有機溶劑易燃易爆,用于工業生產將有重大安全隱患等一系列問題。以無花果樹樹葉為原料,采用無有機溶劑提取超氧化物歧化酶的方法未見有文獻報到。本發明采取的技術方案是:包括下列步驟
一、抽提
選新鮮或低溫保鮮的無花果樹樹葉100克,清洗,加入500~1000mL含0.1~0.5mM?EDTA/0.1~0.5%甘油0.01~0.05%β-巰基乙醇、pH7.8的磷酸鈉緩沖液,勻漿,抽提1~2小時,除渣過濾,5000~8000rpm離心10min;
二、鹽析
向上清液中加入固體硫酸銨至40%飽和度,8000~10000rpm離心10min,向上清中補加硫酸銨至85%飽和度,靜置1~2小時,8000~10000rpm離心10~20min。沉淀用50~80ml的5~10mM,pH7.8的磷酸鈉緩沖液溶解,并在4℃下對該緩沖液透析40~60小時,8000~10000rpm離心5~10min,收集上清液;
三、陰離子交換層析
將上清液加入經5~10mM,pH7.8的磷酸鈉緩沖液平衡的DEAE-Sepharose?Fast?Flow陰離子交換柱,用5~10mM,pH7.8的磷酸鈉緩沖液洗脫未結合的蛋白,采用5~10mM,pH7.8的磷酸鈉緩沖液含0.1~0.2M的氯化鈉洗脫目的蛋白,以紫外檢測并收集蛋白峰,同時檢測其酶活性,合并活性峰,凍干濃縮至3~5ml;
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