[發明專利]一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法及其應用有效
| 申請號: | 202210099285.3 | 申請日: | 2022-01-27 |
| 公開(公告)號: | CN114480562B | 公開(公告)日: | 2023-09-19 |
| 發明(設計)人: | 梁思成;肖麗君;呂沐瀚;陽泰;鐘曉琳;齊曉怡;鄧明明 | 申請(專利權)人: | 西南醫科大學附屬醫院 |
| 主分類號: | C12Q1/26 | 分類號: | C12Q1/26;C12Q1/18;C12R1/145 |
| 代理公司: | 成都君合集專利代理事務所(普通合伙) 51228 | 代理人: | 何巍 |
| 地址: | 646000 四*** | 國省代碼: | 四川;51 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 一種 基于 pfor 活性 導向 fmt 供體 篩選 方法 及其 應用 | ||
1.一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法,其特征在于,以艱難梭菌體內的PFOR酶為靶點,通過測試FMT供體提供的糞菌液對PFOR酶的抑制率,篩選預測和/或評價FMT對于艱難梭菌感染的治療效果,具體包括以下步驟:
(1)培養帶有PFOR酶質粒的大腸桿菌;
(2)誘導帶有PFOR酶質粒的大腸桿菌產生PFOR酶;
(3)提取大腸桿菌產生PFOR酶;
(4)制備FMT供者所提供的糞菌液;
(5)配制PFOR酶的反應體系,通過體外實驗,檢測FMT供者所提供的糞菌液在PFOR酶的反應體系中,對PFOR酶的抑制情況;
(6)根據FMT供體提供的糞菌液對PFOR酶的抑制率,篩選預測和/或評價FMT對于艱難梭菌感染的治療效果。
2.根據權利要求1所述的一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法,其特征在于,所述步驟(1)中,培養帶有PFOR酶質粒的大腸桿菌的具體如下:
(1.1)制備LB培養基,具體包括液體培養基和固定培養基:
(1.1.1)液體培養基的配制:將5g?LB肉湯粉末溶于500ml蒸餾水,置于高壓蒸汽滅菌鍋中,121℃高壓滅菌15min,培養瓶內液體體積不超過瓶本身量程的1/3,待其冷卻后加入氨芐青霉素,使其終濃度為100μg/mL,混勻即可;
(1.?1.?2)固體培養基的配制:將3.5g?LB瓊脂粉末溶于100ml蒸餾水,置于高壓蒸汽滅菌鍋中,121℃高壓滅菌15min,65℃將培養基從高溫滅菌鍋中取出,在固體培養基凝固之前加入終濃度為100μg/mL氨芐青霉素后混勻,然后將培養基倒入培養皿中,靜置待其冷卻凝固;
(1.2)選取帶有PFOR酶質粒的大腸桿菌進行平板接種:挑取單菌落,在已加入氨芐青霉素的固體培養基中進行平板劃線,置于細菌培養箱中,37℃,培養12小時左右;
(1.3)培養12小時后,在已經生長細菌得到平板上挑取單菌落到含有50ML已加入氨芐青霉素的液體培養基的離心管中,放在震蕩培養箱中,37℃,220rpm,200min,震蕩200分鐘后,加入異丙基-β-D-硫代半乳糖苷進行誘導,IPTG終濃度為0.5mMol/ml,置于震蕩培養箱中,25℃,220rpm,20h。
3.根據權利要求1所述的一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法,其特征在于,所述步驟(2)中,誘導帶有PFOR酶質粒的大腸桿菌產生PFOR酶的具體過程為:使用100μg/ml濃度氨芐青霉素誘導大腸桿菌質粒表達,使用終濃度為0.5mM的異丙基-β-D-硫代半乳糖苷誘導PFOR酶的產生。
4.根據權利要求1所述的一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法,其特征在于,所述步驟(3)中,提取大腸桿菌產生PFOR酶的具體過程為:取50ml誘導菌液,12000g,4℃,5min,離心去上清;純水等體積重懸,再次離心去上清;然后10mL純水重懸,10mL菌液冰上400W超聲5s,間隔5s,持續10min,所獲得的溶液即含有PFOR的粗酶液。
5.根據權利要求1所述的一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法,其特征在于,所述步驟(4)中,制備FMT供者所提供的糞菌液的具體過程為,挑選健康狀況、飲食習慣良好的FMT供者既往提供的糞便,將其均質,在最終濃度為50mg糞便/mL的無菌鹽水中稀釋,收集的樣本以100g離心2分鐘,收集上清液并通過70μm和0.22μm濾膜,收集上清。
6.根據權利要求1所述的一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法,其特征在于,所述步驟(5)中,PFOR酶的反應體系具體為,pH=7.4的100mM磷酸鉀緩沖液、10mM丙酮酸鈉、ε=9.2mM-1·cm-1at546nm的5mM1,1'-二芐基-4,4'-聯吡啶鎓鹽二氯化物水合物、0.18mM輔酶A、1mMMgCl2。
7.根據權利要求1所述的一種基于PFOR酶活性導向的FMT供體篩選方法,其特征在于,所述步驟(5)中,通過體外實驗檢測FMT供者所提供的糞菌液對PFOR酶抑制情況的具體過程為:在PFOR酶的反應體系中加入50μL粗酶液和10μL糞無菌液,定容至200μL。
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