[發(fā)明專利]植物膜結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子原核表達純化的方法在審
| 申請?zhí)枺?/td> | 202011279881.7 | 申請日: | 2020-11-16 |
| 公開(公告)號: | CN112322646A | 公開(公告)日: | 2021-02-05 |
| 發(fā)明(設(shè)計)人: | 李曉娟;張原;魯雨晴;邊佳輝;姚曉敏;張耿;蘇曉;劉佩佩 | 申請(專利權(quán))人: | 北京林業(yè)大學(xué) |
| 主分類號: | C12N15/70 | 分類號: | C12N15/70;C12N15/66;C12N15/62;C12N15/29;C12P21/02;C07K14/415;C07K1/22 |
| 代理公司: | 北京化育知識產(chǎn)權(quán)代理有限公司 11833 | 代理人: | 涂琪順 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 植物 結(jié)合 轉(zhuǎn)錄 因子 表達 純化 方法 | ||
1.植物膜結(jié)合轉(zhuǎn)錄因子原核表達純化的方法,其特征在于,包括如下步驟:
步驟1:設(shè)計引物構(gòu)建原核表達載體
1)設(shè)計包含相應(yīng)酶切位點的無縫克隆引物,隨后擴增目的基因,在微量PCR離心管中配制10μL PCR反應(yīng)液,反應(yīng)體系為:pfu DNAPolymerase 1μL,Buffer(10×)1μL,Mg2+1μL,dNTP1μL,Primer-forward和Primer-reverse兩種擴增引物各0.5μL,cDNA 1μL,余量用雙蒸水補齊至10μL;
2)PCR反應(yīng)程序:將配制好的PCR反應(yīng)液,放于PCR儀內(nèi),進行PCR反應(yīng),反應(yīng)程序為:94℃預(yù)變性1min,94℃變性1min,55℃退火90s,72℃延伸90s 36個循環(huán),72℃延伸10min,得到PCR產(chǎn)物;
3)利用NEB公司酶切試劑盒中的限制性內(nèi)切酶對PET 30a原核表達載體進行雙酶切:20μL的酶切反應(yīng)液成分為:濃度為50ng/μL質(zhì)粒DNA 5~10μL,NEB Buffer(10×)2μL,BSA(100×)0.2μL,酶10.5μL,酶20.5μL,余量為雙蒸水補齊;
4)利用無縫克隆技術(shù)將擴增的目的基因連接進入PET 30a原核表達載體中,配置10μL的反應(yīng)液,反應(yīng)體系為:目的基因擴增片段XμL,線性化載體YμL,SmeaLess CLoning Mix(2×)5μL,其余為雙蒸水補齊,其中線性化載體與目的基因擴增片段的摩爾比應(yīng)介于1:1-1:3之間;
5)PCR連接反應(yīng)程序:將配制好的PCR反應(yīng)液,放于PCR儀內(nèi),反應(yīng)程序為:50℃保溫45min,16℃持續(xù)30min等待回收;
6)將PET 30a原核表達載體與目的基因的重組質(zhì)粒通過電轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)入大腸桿菌BL21(DE3)表達菌株;
7)在終濃度為50ng/mL的卡那霉素LB固體培養(yǎng)基上均勻涂布活化后的菌液,篩選成功轉(zhuǎn)入重組質(zhì)粒的陽性菌株;
8)選取單菌落,在卡那霉素終濃度為50ng/mL的LB液體培養(yǎng)基中充分活化擴增菌體;
9)利用目的基因的檢測引物檢測活化菌液是否為陽性菌株,配置10μL的反應(yīng)液,反應(yīng)體系為:Taq酶(2×)5μL,Primer-forward-check和Primer-reverse-check兩種目的基因檢測引物各0.5μL,不同活化菌株的菌液為模板1μL,余量為雙蒸水補齊;
步驟2:原核系統(tǒng)中蛋白的表達
1)在500mL卡那霉素終濃度為50ng/mL的LB液體培養(yǎng)基中加入OD600在0.8的BL21(DE3)大腸桿菌1-2mL;
2)在37℃180rpm的搖床中,擴增菌體6-8小時,菌體擴增前搖床紫外滅菌20min;
3)檢測菌液OD600在0.8時,向菌液中加入終濃度為0.3-0.4mM的IPTG。
4)18℃160rpm的搖床中誘導(dǎo)12-14h;
5)離心機4℃8000rpm離心收集菌體;
步驟3:蛋白純化
1)離心機4℃8000rpm離心收集菌體,重懸于pH:7.4的His標簽融合蛋白裂解buffer,所述pH:7.4的His標簽融合蛋白裂解buffer溶液的配置方法為:pH:7.4的Tris-HcL(終濃度:20mM),NaCL(終濃度:500mM),ImidazoLe(終濃度:25mM),PMSF(終濃度:1mM),其余為水,其中PMSF需要在使用前加入到溶液中,配置完成的溶液需通過0.45μm的濾菌膜過濾除菌并置于4℃預(yù)冷;
2)將細菌懸浮液置于冰上,超聲破碎細菌獲得破碎的細菌懸浮液,超聲波粉碎儀的參數(shù)設(shè)置為:在28℃60%的超聲強度下,超聲粉碎菌體10min,該過程分別由5s的超聲時間和5s的間隔時間循環(huán)交替組成;
3)離心機4℃12000rpm離心破碎的細菌懸浮液90min,取上清蛋白溶液于新的離心管中,全程應(yīng)維持蛋白溶液處在4℃的低溫環(huán)境下;
4)用10倍體積的ddH2O清洗gLutathione-sepHarose 4B填料,隨后用10倍體積的pH:7.4的His標簽融合蛋白重懸buffer清洗填料,所述pH:7.4的His標簽融合蛋白重懸buffer溶液的配置方法為:pH:7.4的Tris-HcL(終濃度:20mM),NaCL(終濃度:500mM),ImidazoLe(終濃度:25mM),其余為雙蒸水,配置完成的溶液需通過0.45μm的濾菌膜過濾除菌并置于4℃預(yù)冷;
5)將蛋白溶液與gLutathione-sepHarose 4B填料混勻,放在靜音混合器上4℃混合2h;
6)將結(jié)合后的混合液預(yù)裝柱,待上述蛋白液全部流出后,用4℃預(yù)冷pH:7.4的His標簽融合蛋白重懸buffer清洗柱填料;
7)清洗過程中多次檢測雜蛋白的含量,清洗至完全洗去雜蛋白即可;
8)雜蛋白去除干凈后封閉柱子,加入4℃預(yù)冷的pH:7.4的His標簽融合蛋白洗脫buffer與填料多次混勻,靜置10min,所述pH:7.4的His標簽融合蛋白洗脫buffer溶液的配置方法為:pH:7.4的Tris-HcL(終濃度:20mM),NaCL(終濃度:500mM),ImidazoLe(終濃度:250mM),其余為雙蒸水,配置完成的溶液需通過0.45μm的濾菌膜過濾除菌并置于4℃預(yù)冷;
9)收集洗脫液,即可用于后續(xù)實驗和結(jié)果分析。
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