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[發(fā)明專(zhuān)利]一種α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球及其制備和應(yīng)用方法有效

專(zhuān)利信息
申請(qǐng)?zhí)枺?/td> 201711380058.3 申請(qǐng)日: 2017-12-20
公開(kāi)(公告)號(hào): CN107961769B 公開(kāi)(公告)日: 2020-07-14
發(fā)明(設(shè)計(jì))人: 楊春燕;李博 申請(qǐng)(專(zhuān)利權(quán))人: 河北工業(yè)大學(xué)
主分類(lèi)號(hào): B01J20/26 分類(lèi)號(hào): B01J20/26;B01J20/28;B01J20/30;C12N9/36;C12N9/88;C07K14/57;C07K1/113;C07K1/14
代理公司: 天津翰林知識(shí)產(chǎn)權(quán)代理事務(wù)所(普通合伙) 12210 代理人: 趙鳳英
地址: 300130 天津市紅橋區(qū)*** 國(guó)省代碼: 天津;12
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摘要:
搜索關(guān)鍵詞: 一種 丁酮 修飾 接枝 聚乙烯 亞胺 聚糖 及其 制備 應(yīng)用 方法
【權(quán)利要求書(shū)】:

1.一種α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球的應(yīng)用,其特征為該微球?yàn)楸砻娼又垡蚁﹣啺返臍ぞ厶俏⑶颍–S-PEI),表面再修飾有α-丁酮酸,其中,微球上接枝的聚乙烯亞胺的量以陰離子交換容量計(jì)為918~1275 μmol/g,修飾的α-丁酮酸的量以陽(yáng)離子交換容量計(jì)為612~1860 μmol/g,微球的等電點(diǎn)值為5.5~10.0;

所述的α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球的制備方法,包括以下步驟:

將CS-PEI微球置于錐形瓶中,加入濃度為0.5~5 g/L的α-丁酮酸溶液,使微球在反應(yīng)體系中的濃度為80~100 g/L,并用NaOH溶液調(diào)節(jié)體系pH值為4~6,然后將體系置于空氣振蕩器中,在溫度為25~30 ℃、轉(zhuǎn)速為120~170 rpm條件下反應(yīng)6~8 h;再將微球用去離子水,在轉(zhuǎn)速為5000~8000 rpm條件下離心水洗干凈后,加入0.5~0.6 g/L NaBH4溶液,使微球在體系中的濃度為80~100 g/L,并用HCl溶液調(diào)節(jié)體系pH值為7~8,然后將體系置于空氣振蕩器中,在溫度為25~30 ℃、轉(zhuǎn)速為120~170 rpm條件下反應(yīng)12~24 h;反應(yīng)結(jié)束后,將微球用去離子水,在轉(zhuǎn)速為5000~8000 rpm條件下離心水洗,得到α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球(CS-PEI-α-丁酮酸);

該微球用于輔助蛋白質(zhì)復(fù)性并對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行吸附提取,包括如下步驟:

1)確定待復(fù)性及吸附提取的蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)值,然后將其與下一步將要使用的復(fù)性緩沖液的pH值相比;如果蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)值大于復(fù)性緩沖液的pH值,則從所述的α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球中選取等電點(diǎn)值也大于復(fù)性緩沖液的pH值的微球;如果蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)值小于復(fù)性緩沖液的pH值,則從所述的α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球中選取等電點(diǎn)值也小于復(fù)性緩沖液的pH值的微球;

所述的復(fù)性緩沖液中含有1~2 mol/L 尿素、20~50 mmol/L Tris–HCl及1~3 mmol/LEDTA,溶劑為去離子水,且pH值為7.0~9.0;

2) 將CS-PEI-α-丁酮酸微球加入到復(fù)性緩沖液中,使復(fù)性體系中微球濃度為100~150g/L;上述混合物置于空氣振蕩器中,在溫度為25~30 ℃、轉(zhuǎn)速為120~170 rpm條件下振蕩預(yù)平衡直至溫度恒定;然后向其中加入待復(fù)性的濃度為10~20 g/L變性蛋白質(zhì)溶液,使復(fù)性體系中蛋白質(zhì)濃度為0.5~2 g/L;混合均勻后,置于空氣振蕩器中,在轉(zhuǎn)速為120~170rpm條件下復(fù)性3~12 h,復(fù)性溫度與此前復(fù)性緩沖液預(yù)平衡的溫度相同;

所述的變性蛋白質(zhì)溶液的制備方法為:將蛋白質(zhì)溶解于變性緩沖液中,使蛋白質(zhì)濃度為10~20 g/L,于25~40 ℃變性3~24 h;

所述的變性緩沖液中含有8 mol/L尿素、20~50 mmol/L Tris–HCl及1~3 mmol/LEDTA,溶劑為去離子水,且pH值為7.0~9.0;

3)復(fù)性完成后,用0.1~0.5 mol/L的NaOH溶液或0.1~0.5 mol/L的HCl溶液調(diào)節(jié)上述體系pH值為6.0~10.0,從而將步驟2)中的復(fù)性緩沖液變?yōu)槲骄彌_液,將體系置于空氣振蕩器中,在溫度為25~30 oC、轉(zhuǎn)速為120~170 rpm條件下吸附3~12 h。

2. 如權(quán)利要求1所述的α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球的應(yīng)用,其特征為所述的α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球的制備方法中,所述的NaOH溶液的濃度為0.1~0.5 mol/L,HCl溶液的濃度為0.1~0.5 mol/L。

3.如權(quán)利要求1所述的α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球的應(yīng)用,其特征為所述的輔助蛋白質(zhì)復(fù)性并對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行吸附提取中,步驟3)中所述的吸附緩沖液pH值為介于步驟2)中CS-PEI-α-丁酮酸微球的等電點(diǎn)值及蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)值之間的pH值。

4.如權(quán)利要求1所述的α-丁酮酸修飾的接枝聚乙烯亞胺的殼聚糖微球的應(yīng)用,其特征為所述的輔助蛋白質(zhì)復(fù)性并對(duì)蛋白質(zhì)進(jìn)行吸附提取中,所述的蛋白質(zhì)為溶菌酶、牛碳酸酐酶II或重組人γ-干擾素。

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