[發(fā)明專利]植物內(nèi)生細(xì)菌多樣性16SrDNA擴(kuò)增子制備方法在審
| 申請(qǐng)?zhí)枺?/td> | 201710568923.0 | 申請(qǐng)日: | 2017-07-13 |
| 公開(公告)號(hào): | CN107312847A | 公開(公告)日: | 2017-11-03 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 樊濟(jì)才;陳龍;張璐璐;高楠;胡秋萍 | 申請(qǐng)(專利權(quán))人: | 上海美吉生物醫(yī)藥科技有限公司 |
| 主分類號(hào): | C12Q1/68 | 分類號(hào): | C12Q1/68;C12Q1/04;C12N15/11;C12N15/10 |
| 代理公司: | 上海恒銳佳知識(shí)產(chǎn)權(quán)代理事務(wù)所(普通合伙)31286 | 代理人: | 黃海霞 |
| 地址: | 201321 上海*** | 國(guó)省代碼: | 上海;31 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 植物 細(xì)菌 多樣性 16 srdna 擴(kuò)增 制備 方法 | ||
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及微生物多樣性高通量測(cè)序技術(shù)領(lǐng)域,尤其涉及植物內(nèi)生細(xì)菌多樣性的研究。
背景技術(shù)
植物內(nèi)生細(xì)菌(Endophytic bacteria)是能夠定殖于健康植物細(xì)胞間隙或者細(xì)胞內(nèi),并與宿主植物建立起和諧聯(lián)合關(guān)系的一類微生物。它們可以為植物提供礦物質(zhì)營(yíng)養(yǎng),也可以間接保護(hù)植物不受病原菌的侵害。但是在進(jìn)行植物內(nèi)生細(xì)菌的研究過程中,內(nèi)生細(xì)菌的分離鑒定一般比較困難。集合16S rDNA特異片段PCR擴(kuò)增與第二代高通量測(cè)序技術(shù)進(jìn)行植物內(nèi)生細(xì)菌的鑒定是近年來比較流行的一種方法,但是提取的總DNA中含有大量的宿主DNA,包括大量的線粒體DNA和葉綠體DNA等,給細(xì)菌16S rDNA的擴(kuò)增子的制備造成了極大的干擾。使用傳統(tǒng)的引物如338F/806R、515F/907R等無法將細(xì)菌16S rDNA與宿主線粒體或者葉綠體DNA在高通量測(cè)序前進(jìn)行有效的分離,往往導(dǎo)致測(cè)序結(jié)果中存在大量的植物宿主序列。發(fā)明人在使用引物338F/806R、515F/907R進(jìn)行植物內(nèi)生細(xì)菌16S rDNA測(cè)序時(shí)發(fā)現(xiàn),在測(cè)序數(shù)據(jù)中宿主的占比高達(dá)59.4%~92.8%。高的宿主數(shù)據(jù)占比將會(huì)嚴(yán)重浪費(fèi)測(cè)序數(shù)據(jù)量,影響對(duì)植物內(nèi)生細(xì)菌多樣性的分析。在內(nèi)生細(xì)菌相關(guān)的研究中為了獲得一定數(shù)據(jù)量的微生物數(shù)據(jù),通常需要增加測(cè)序的通量,這也就意味著研究成本將大大增加。
文獻(xiàn)[1]中披露了使用引物799F/1492R擴(kuò)增植物內(nèi)生細(xì)菌16S rDNA V5~V8區(qū),可以有效減少宿主葉綠體DNA的擴(kuò)增,同時(shí)該引物擴(kuò)增宿主線粒體DNA與細(xì)菌16S rDNA的產(chǎn)物大小存在明顯的差異。文獻(xiàn)[2]披露了使用引物799F/1392R也可以實(shí)現(xiàn)對(duì)宿主葉綠體DNA擴(kuò)增的有效減少以及線粒體DNA與細(xì)菌16S rDNA擴(kuò)增子的顯著區(qū)分。基于文獻(xiàn)[3]中的方法,本發(fā)明人在SILVA SSU 128RefNR數(shù)據(jù)庫中應(yīng)用TestPrimer工具測(cè)試引物799F/1492R和799F/1392R對(duì)細(xì)菌的覆蓋度,結(jié)果發(fā)現(xiàn),在序列完全匹配(0mismatch)時(shí),引物799F/1492R和799F/1392R對(duì)細(xì)菌的覆蓋度分別為29.2%和69.8%。所述799F的序列為SEQ ID NO:1,所述1492R的序列為SEQ ID NO:3,所述1392R的序列為SEQ ID NO:2。但是無論是引物799F/1492R還是引物799F/1392R,其擴(kuò)增的細(xì)菌16S rDNA擴(kuò)增子均大于600bp,在以往的研究中主要基于454測(cè)序平臺(tái)進(jìn)行測(cè)序。然而,由于Roche(羅氏)公司不再生產(chǎn)用于454測(cè)序平臺(tái)的試劑,導(dǎo)致該平臺(tái)已于2016年退出市場(chǎng)。目前在二代測(cè)序市場(chǎng)中,Illumina公司的MiSeq測(cè)序平臺(tái)的測(cè)序讀長(zhǎng)最長(zhǎng),可達(dá)300bp。但,即使使用MiSeq測(cè)序平臺(tái)的2×300測(cè)序模式進(jìn)行測(cè)序,在16S rDNA擴(kuò)增子測(cè)序項(xiàng)目的研究中也無法組裝出如此長(zhǎng)(≥600bp)的DNA片段。
許多研究顯示使用引物799F/1193R也可以有效減少宿主葉綠體DNA的擴(kuò)增,同時(shí)實(shí)現(xiàn)線粒體DNA與細(xì)菌16S rDNA擴(kuò)增子的分離,其中擴(kuò)增線粒體DNA的片段大小約為600bp,細(xì)菌16S rDNA擴(kuò)增子的大小約為400bp, 其目的擴(kuò)增片段長(zhǎng)度可適用于目前的二代測(cè)序平臺(tái)(參考文獻(xiàn)[4]和文獻(xiàn)[5]和文獻(xiàn)[6])。但是本發(fā)明人在使用該引物進(jìn)行植物內(nèi)生細(xì)菌多樣性16S rDNA測(cè)序研究時(shí)發(fā)現(xiàn)宿主葉綠體數(shù)據(jù)占比仍然較高,參考表1。
參考文獻(xiàn):
[1].Chelius M K,Triplett E W.The Diversity of Archaea and Bacteria in Association with the Roots of Zea mays L[J].Microbial ecology,2001,41(3):252-263.
[2].Bai Y,Müller D B,Srinivas G,et al.Functional overlap of the Arabidopsis leaf and root microbiota[J].Nature,2015,528(7582):364-9.
[3].Quast C,Pruesse E,Yilmaz P,et al.The SILVA ribosomal RNA gene database project:improved data processing and web-based tools[J].Nucleic acids research,2013,41:590-596.
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