[發(fā)明專(zhuān)利]一種水培液中微生物基因組DNA的提取方法有效
| 申請(qǐng)?zhí)枺?/td> | 201410270513.4 | 申請(qǐng)日: | 2014-06-18 |
| 公開(kāi)(公告)號(hào): | CN104087573A | 公開(kāi)(公告)日: | 2014-10-08 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 方長(zhǎng)旬;林文雄;李程勛;李穎哲;林威鵬 | 申請(qǐng)(專(zhuān)利權(quán))人: | 福建農(nóng)林大學(xué) |
| 主分類(lèi)號(hào): | C12N15/10 | 分類(lèi)號(hào): | C12N15/10 |
| 代理公司: | 福州元?jiǎng)?chuàng)專(zhuān)利商標(biāo)代理有限公司 35100 | 代理人: | 蔡學(xué)俊 |
| 地址: | 350002 福*** | 國(guó)省代碼: | 福建;35 |
| 權(quán)利要求書(shū): | 查看更多 | 說(shuō)明書(shū): | 查看更多 |
| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 一種 水培 微生物 基因組 dna 提取 方法 | ||
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及一種水培液中微生物基因組DNA的提取方法,屬于生物技術(shù)領(lǐng)域。
背景技術(shù)
水培種植法作為無(wú)土栽培的重要形式,具有節(jié)肥、節(jié)水、省工、省藥、高產(chǎn)、優(yōu)質(zhì)、潔凈等優(yōu)點(diǎn)。由于其不受時(shí)間限制,可供植物利用的營(yíng)養(yǎng)充分、均勻等優(yōu)點(diǎn),因而在現(xiàn)代農(nóng)業(yè)設(shè)施生產(chǎn)過(guò)程中逐漸被大范圍采用。在這些水培種植系統(tǒng)中,微生物也廣泛存在于水培液中,這些微生物能夠?qū)θ芤褐械牡V質(zhì)營(yíng)養(yǎng)元素以及植物根系釋放的次生物質(zhì)進(jìn)行轉(zhuǎn)化,在植物與礦質(zhì)養(yǎng)分之間起到了重要的媒介作用,因而是水培種植條件下,植物能夠正常生長(zhǎng)發(fā)育的重要因子。因此,研究水培液中微生物的結(jié)構(gòu)組成與數(shù)量分布,能夠?yàn)閮?yōu)化植物的最佳水培種植條件提供重要基礎(chǔ)。然而,由于傳統(tǒng)的微生物研究方法存在著無(wú)法獲得環(huán)境中全部微生物的限制因素,由此導(dǎo)致對(duì)相應(yīng)環(huán)境中微生物遺傳背景信息的了解也不全面,從而也限制了水體微生物宏基因組信息的深入發(fā)掘。利用現(xiàn)代生物技術(shù),如高通量測(cè)序技術(shù),以及基于PCR的末端限制性長(zhǎng)度態(tài)性(T-RFLP)技術(shù)、單鏈構(gòu)型多態(tài)性(SSCP)、變性/溫度梯度凝膠電泳(DGGE/TGGE)技術(shù),長(zhǎng)度多態(tài)性(AFLP)技術(shù)則克服了傳統(tǒng)培養(yǎng)方法所造成的土壤微生物信息大量丟失的弊端,更加全面、精確地揭示出水體微生物群落結(jié)構(gòu)和功能的多樣性。
對(duì)于此,如何簡(jiǎn)便快捷地從水培液中獲得微生物的DNA是深入研究水培液中微生物組成的關(guān)鍵,由于水培液的相對(duì)體積大,微生物分布分散,直接提取往往會(huì)因?yàn)闃悠烦跏俭w積、微生物數(shù)量低而導(dǎo)致提取效率低下,因此需要研制適用于水體微生物DNA提取的方便、快捷、實(shí)用的方法,解決使用常規(guī)方法所獲得的微生物總量少、細(xì)胞裂解率低、DNA產(chǎn)量低的問(wèn)題。
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明提供一種水培液中微生物基因組DNA的提取方法,利用該方法提取的核酸純度較高,且產(chǎn)量較高。
一種水培液微生物基因組DNA的提取方法,包括以下步驟:
(1)水體樣品雜質(zhì)的去除:取100~250ml的水培液用定性濾紙過(guò)濾3~5次,并收集濾液;進(jìn)一步用孔徑為0.22μm的濾膜進(jìn)行超濾,通過(guò)濾膜收集水體中的菌體,剪碎濾膜并置于10ml的離心管中;
(2)水體微生物細(xì)胞裂解:往步驟(1)10ml的離心管中加入500μl無(wú)菌水,漩渦震蕩,然后在液氮2~3?min和65℃水浴5min中反復(fù)凍融3~5次,凍融結(jié)束后,于4℃?13000rpm下離心?10min,棄上清,收集沉淀,加入100μl?1×TE,重懸沉淀,加入30μl?50mg/ml的溶菌酶,37℃溫浴1~3h,再加入500μl?的10%?SDS,以及10ul?20mg/ml的蛋白酶K,37℃溫浴1~2h;
(3)核酸游離及沉淀:步驟(2)溫浴結(jié)束后加入200μl?5M的NaCl,加入100μl?65℃預(yù)熱的3×CTAB/NaCl,65℃溫浴1h,待冷卻后,加入等體積的酚、氯仿混合液,酚、氯仿的體積比為(1:1),4℃?11000rpm?離心10min,取上清,再加入等體積的酚、氯仿混合液,酚、氯仿的體積比為(1:1),4℃?11000rpm?離心10min,將上清移至新管并加入等體積預(yù)冷的異丙醇,-20℃放置1h,然后4℃?11000rpm?離心?20min,棄上清,沉淀用70%乙醇重懸并于4℃?11000rpm?下離心?10min,棄上清,沉淀于超凈工作臺(tái)中吹干后溶于30~50ul的無(wú)菌水中,-80℃保存。
所述水培液微生物基因組DNA的提取方法,優(yōu)選的步驟如下:
(1)水體樣品雜質(zhì)的去除:取100ml的水溶液用定性濾紙重復(fù)過(guò)濾3次,以去除水體中含有的雜質(zhì),并收集濾液;進(jìn)一步用孔徑為0.22μm的濾膜進(jìn)行超濾,通過(guò)濾膜收集水體中的菌體,剪碎濾膜并置于10ml的離心管中。
水體微生物細(xì)胞裂解:往離心管中加入500μl無(wú)菌水,漩渦震蕩,液氮凍2min后置于65℃水浴鍋中溫浴5min,如此反復(fù)凍融3次。凍融結(jié)束后,樣品于4℃?13000rpm下離心?10min,棄上清,收集沉淀。加入100μl?1×TE,重懸沉淀。加入30μl?50mg/ml的溶菌酶,37℃溫浴1h。加入500μl?的10%?SDS,以及10ul?20mg/ml的蛋白酶K,37℃溫浴1h。
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