[發(fā)明專利]一種蠟蚧菌蛋白酶分離純化的方法無效
| 申請(qǐng)?zhí)枺?/td> | 201310318906.3 | 申請(qǐng)日: | 2013-07-27 |
| 公開(公告)號(hào): | CN103409399A | 公開(公告)日: | 2013-11-27 |
| 發(fā)明(設(shè)計(jì))人: | 邱君志;董冬;涂潔;李小霞;孟麗雪;何肖云;曹麗萍;張以盼;郭慶豐;姚靈丹 | 申請(qǐng)(專利權(quán))人: | 福建農(nóng)林大學(xué) |
| 主分類號(hào): | C12N9/58 | 分類號(hào): | C12N9/58 |
| 代理公司: | 福州元?jiǎng)?chuàng)專利商標(biāo)代理有限公司 35100 | 代理人: | 蔡學(xué)俊 |
| 地址: | 350002 福*** | 國(guó)省代碼: | 福建;35 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關(guān)鍵詞: | 一種 蠟蚧菌 蛋白酶 分離 純化 方法 | ||
技術(shù)領(lǐng)域
本發(fā)明涉及蛋白酶的分離純化工藝。更具體地,本發(fā)明涉及一種蠟蚧菌蛋白酶的分離純化方法。?
背景技術(shù)
蠟蚧菌隸屬絲孢菌類(Hyphomycetes),廣泛分布于熱帶、亞熱帶和溫帶,能寄生蚧類、蚜蟲類、螨類和粉虱,還可寄生鱗翅目的一些害蟲及線蟲、薊馬等。20世紀(jì)70年代以來,歐洲一些國(guó)家及美國(guó)、日本等國(guó)對(duì)利用蠟蚧菌防治溫室蔬菜害蟲給予極大重視。蠟蚧菌對(duì)保護(hù)地粉虱各蟲態(tài)均可感染,可以在粉虱種群中流行。在不適宜傳播條件時(shí),能在溫室中生存一段時(shí)間。且蠟蚧菌的流行受粉虱種群密度的限制不大,不受人工培養(yǎng)基上轉(zhuǎn)代培養(yǎng)次數(shù)等的影響,致病力穩(wěn)定,不易變異。因此該菌被認(rèn)為是防治粉虱的重要病原微生物,而得到大力研究與開發(fā)。
蛋白酶是一類可以催化蛋白質(zhì)水解反應(yīng)的酶,廣泛存在于各種生物體中。它們參與細(xì)胞的正常生理以及異常的病理?xiàng)l件下的諸如蛋白質(zhì)水解、細(xì)胞生長(zhǎng)和遷移、酶原激活、激素釋放等各種復(fù)雜的過程。蛋白質(zhì)是昆蟲體壁的重要組成部分,而穿透體壁是在昆蟲病原真菌感染寄主的重要過程之一。蠟蚧菌胞外蛋白酶可分解蛋白質(zhì)性質(zhì)的昆蟲表皮,這有助于菌絲的入侵,并為菌絲提供營(yíng)養(yǎng)。對(duì)蛋白酶進(jìn)行分離純化和其蛋白酶酶學(xué)性質(zhì)的初步研究,為揭示蟲生真菌致病機(jī)理并指導(dǎo)其生產(chǎn)應(yīng)用奠定基礎(chǔ),可為將來真菌防治害蟲的深入研究提供科學(xué)依據(jù)。?
發(fā)明內(nèi)容
本發(fā)明的目的在于提供一種蠟蚧菌蛋白酶分離純化的方法,為蛋白酶基因的克隆表達(dá)和揭示蟲生真菌致病機(jī)理并指導(dǎo)其生產(chǎn)應(yīng)用奠定基礎(chǔ);
為了實(shí)現(xiàn)上述目的,本發(fā)明提供了如下技術(shù)方案:
(1)用優(yōu)化試驗(yàn)篩選出的培養(yǎng)基培養(yǎng)菌株,在蛋白酶活性達(dá)最高時(shí)取發(fā)酵液;
(2)蠟蚧菌蛋白酶,在上述發(fā)酵液基礎(chǔ)上,由下述純化方法獲得:
(2.1)粗酶液的制備:將發(fā)酵液在8500rpm離心10min,上清液用真空抽濾,收集濾液。向?yàn)V液中加入固體硫酸銨至飽和度為60%wt,4℃靜置過夜。11000rpm、4℃離心15min收集沉淀,用適量的溶解沉淀。12000rpm、4℃離心15min除去不溶物體,上清液0.02mol/L?Tris-HCl緩沖液(pH8.0)經(jīng)透析,再用聚乙二醇濃縮后即為粗酶液。
(2.2)DEAE?Sepharose?fast?flow陰離子交換柱層析:用0.02mol/L?Tris-HCl緩沖液(pH8.0)充分平衡DEAE?Sepharose?fast?flow陰離子交換柱層析柱,上樣經(jīng)過PEG20000濃縮的粗酶液,先用0.02mol/L?Tris-HCl緩沖液(pH8.0)沖洗層析柱,后換用0-1mol/L?NaCl的0.02mol/L?Tris-HCl緩沖液(pH8.0)進(jìn)行連續(xù)洗脫。洗脫條件設(shè)置為:流速30mL/h;5mL/管,收集具有酶活性部份。
(2.3)Sephadex?G-150分子篩層析:通過0.02mol/L?Tris-HCl緩沖液(pH8.0)充分平衡的Sephadex?G-150分子篩層析柱(1.8×100),將2.1收集的具有酶活性部分上樣于其,再用相同的緩沖液進(jìn)行洗脫。洗脫條件設(shè)置為:流速15mL/h;5mL/管。收集酶活性部位。
(2.4)純化蛋白酶的分子量檢測(cè):采用不連續(xù)垂直板電泳系統(tǒng)測(cè)定蛋白酶的純化程度及分子量,分離膠濃度為10%,濃縮膠濃度為5%,凝膠大小為100?mm×70×0.75mm。所用的標(biāo)準(zhǔn)蛋白為:磷酸化酶B94?000;牛血清蛋白67?000;肌動(dòng)蛋白43?000;碳酸酐酶30?000;大豆蛋白酶抑制劑20100;乳清蛋白?14?400。電泳后用考馬斯亮藍(lán)法顯示蛋白條帶。
本發(fā)明采用的殺蟲蠟蚧菌為蠟蚧輪枝菌L.?lecanii?FJ28(邱君志等,金屬離子對(duì)蠟蚧菌幾丁質(zhì)酶活力的影響,激光生物學(xué)報(bào),2009年2月)。
本工藝特異性高,工藝簡(jiǎn)單,蛋白質(zhì)不易失活,純化效果好,回收率高,成本低,具有很好的推廣應(yīng)用價(jià)值。
附圖說明
圖1蛋白酶液的DEAE?Sepharose?fast?flow陰離子交換柱層析結(jié)果
圖2蛋白酶液的Sephadex?G-150分子篩層析結(jié)果
圖3?蠟蚧菌蛋白酶純化過程中各步活性成分SDS-PAGE圖譜;其中泳道M為標(biāo)準(zhǔn)蛋白,泳道1為60%(NH4)2SO4沉淀粗酶液,泳道2為經(jīng)Sephadex?G-150分子篩層析后的純酶。
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具體實(shí)施方法:
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