[發明專利]一種可定量檢測鼠疫耶爾森菌的蛋白懸浮芯片及其制備方法無效
| 申請號: | 200910078820.1 | 申請日: | 2009-03-04 |
| 公開(公告)號: | CN101493469A | 公開(公告)日: | 2009-07-29 |
| 發明(設計)人: | 王靜;孫肖紅;周蕾;楊宇;胡孔新;張曉龍 | 申請(專利權)人: | 中國檢驗檢疫科學研究院 |
| 主分類號: | G01N33/68 | 分類號: | G01N33/68;G01N33/546;G01N33/533 |
| 代理公司: | 北京中創陽光知識產權代理有限責任公司 | 代理人: | 尹振啟 |
| 地址: | 100025北*** | 國省代碼: | 北京;11 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 一種 定量 檢測 鼠疫 耶爾森菌 蛋白 懸浮 芯片 及其 制備 方法 | ||
技術領域
本發明涉及一種可定量檢測細菌的蛋白質懸浮芯片及其制備方法,尤其是適合定量檢測和分析鼠疫耶爾森菌(Yersinia?pestis)的蛋白質懸浮芯片。
背景技術
鼠疫耶爾森菌(Yersinia?pestis)為呈革蘭氏染色陰性、不運動、不形成芽孢的球桿菌,吉母薩、瑞特氏或威森染色呈雙極濃染,能在4-40℃范圍內生長,最適生長溫度為28-30℃,最適生長pH值為7.2-7.6,pH的耐受上下極限分別為pH5.0和pH9.6。鼠疫菌由假結核菌進化而來,正處在進化的活躍時期,其主要宿主為嚙齒動物,主要通過蚤的叮咬在動物間傳播。偶爾可經跳蚤叮咬或接觸帶有鼠疫菌的動物、動物皮毛等引發人類疾病。患者在被染有鼠疫菌的跳蚤叮咬216天后,出現腺鼠疫的癥狀如發熱、寒顫、頭痛、虛弱、嘔吐,淋巴結腫大。原發性敗血型鼠疫的臨床癥狀與其他G-引起的敗血癥類似,引起病人發燒、寒顫、頭痛,有少數患者會由敗血型鼠疫發展為肺鼠疫。通過呼吸道途徑感染的患者發生原發性肺鼠疫,潛伏期為113天,起初象流感癥狀,迅速發展為肺炎并伴有咳嗽和血痰。腺鼠疫不經治療的死亡率約為60%,用抗生素治療后降低到5%以下;敗血型鼠疫和肺鼠疫不經治療死亡率高達100%。
鼠疫在歷史上曾經引起三次世界范圍的大流行,使人類遭受了深重的災難。隨著醫療衛生水平的提高,鼠疫已經得到較好的控制。但是,20世紀90年代以來,世界鼠疫開始活躍,發病人數和疫源地面積都有擴大的趨勢,2000年世界衛生組織(WHO)將鼠疫列為重新抬頭的傳染病。同時,鼠疫菌傳染性強、發病迅速,是生物戰劑和生物恐怖的重要病原之一。
出于公共衛生和國家安全的目的,研究和開發快速、定性、定量檢測傳染病病原體是所屬技術領域中長期致力追求的目標。尤其對于鼠疫菌來說,作為一種烈性傳染病的病原體,能否實現定量檢測至關重要。目前用于鼠疫菌的實驗室常規檢測方法有細菌學檢測方法、血清學檢測方法及檢測核酸的分子生物學方法(Perry,R.D.&Fetherston,J.D.Yersinia?pestis--etiologic?agent?of?plague.Clin?Microbiol?Rev1997,10(1),35-66.)。但是,細菌學檢測方法、血清學檢測方法(例如間接血凝方法)及核酸檢測法等現有檢測技術存在許多缺陷。對于細菌學檢測法,細菌培養耗時較長,不適合對鼠疫菌的快速檢測。莢膜抗原(F1抗原)是目前公認的鼠疫菌種特異性抗原之一,檢測鼠疫菌F1抗原及其抗體是鼠疫診斷的重要依據(Drobkov?VI,Abdullin?JG,DarmovIV.Use?of?the?enzyme?immunoassay?in?the?laboratory?diagnosis?ofplague[J].Zhurnal?Mikrobiol.Epidemiol.Immunobiol.1992,16(10):40-42.;Williams?JE,Arntzen?L,Tyndal?GL,Isaacson?M.Applicationof?enzyme?immunoassay?for?the?confirmation?of?clinically?suspectplague?in?Namibia,1982.Bull.W.H.O.1986,62:745-752.)。檢測鼠疫菌特異性抗體(F1抗體)的間接血凝方法(IHA),靈敏度低,特異性差(Williams,J.E.,Arntzen,L.,Robinson,D.M.&et?al.Comparison?of?passive?haemagglutination?and?enzyme-linkedimmunosorbent?assay?for?serodiagnosis?of?plague.Bull?WHO?1982,60,777-781.)。對于核酸檢測法,盡管采用了PCR技術對鼠疫菌進行檢測和分析(Hinnebusch,J.&Schwan,T.G.New?method?for?plaguesurveillance?using?polymerase?chain?reaction?to?detect?Yersiniapestis?in?fleas.J?Clin?Microbiol?1993,31(6),1511-1514.;Higgins,J.A.,Ezzell,J.,Hinnebusch,B.J.,Shipley,M.,Henchal,E.A.&Ibrahim,M.S.5′nuclease?PCR?assay?to?detect?Yersinia?pestis.JClin?Microbiol?1998,36(8),2284-2288.;Neubauer,H.,Meyer,H.,Prior,J.,Aleksic,S.,Hensel,A.&Splettstosser,W.Acombinat?ion?of?different?polymera?se?chain?reaction(PCR)assaysfor?the?presumptive?identification?of?Yersinia?pestis.J?Vet?MedB?Infect?Dis?Vet?Public?Health?2000,47(8),573-580.),尤其是實時熒光定量PCR技術(Herber?t,T.,Emil,C.R.,Sascha,A.D.&etal.Rapid?detection?of?Yersinia?pestis?with?multiplex?real-timePCR?assays?using?fluorescent?hybridisation?probes.FEMS?ImmunolMed?Microbiol?2003,38,117-126),特異性高,不容易被污染,但是現有PCR技術的方法繁瑣,特別是此類方法包括DNA/RNA的提取和復雜的操作步驟,而且不能用于非核酸物質如蛋白質的檢測,因此核酸檢測法具有局限性且不方便。
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