[發明專利]一種DC細胞與CIK細胞的共培養方法在審
| 申請號: | 201410733771.1 | 申請日: | 2014-12-06 |
| 公開(公告)號: | CN104450616A | 公開(公告)日: | 2015-03-25 |
| 發明(設計)人: | 閆敬武;杜成德;程思博;孟艷芬 | 申請(專利權)人: | 山東世博金都藥業有限公司 |
| 主分類號: | C12N5/0784 | 分類號: | C12N5/0784;C12N5/0783 |
| 代理公司: | 淄博佳和專利代理事務所 37223 | 代理人: | 張雯 |
| 地址: | 255086 山*** | 國省代碼: | 山東;37 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 一種 dc 細胞 cik 培養 方法 | ||
技術領域
一種DC細胞與CIK細胞的共培養方法,屬于細胞培養技術領域。
背景技術
CIK生物免疫治療作為21世紀治療腫瘤的首選方案,廣泛用于各種實體瘤的治療。CIK生物免疫治療具備:1)增殖,可以在短時間內大量擴增;2)CIK細胞來源于自身對人體沒有任何毒副作用;3)殺瘤譜廣,對絕大多數腫瘤都具備殺傷效力;4)殺瘤活性高,且不受CSA、FK506等免疫抑制劑的影響;5)可有效抵抗腫瘤細胞引發的凋亡機制。樹突狀細胞,簡稱DC細胞,?是機體功能最強的專職抗原遞呈細胞,它能高效地攝取、加工處理和遞呈抗原,增殖細胞毒性T淋巴細胞CTL,從而介導強大的特異性抗腫瘤細胞免疫。
DC細胞是機體免疫應答的始動者,能夠誘導持久有力的特異性抗腫瘤免疫反應;CIK細胞可通過非特異性免疫殺傷作用清除腫瘤患者體內微小殘余病灶,所以負載腫瘤抗原的DC與CIK的有機結合,即DC-CIK細胞,能產生特異性和非特異性的雙重抗腫瘤效應。DC細胞與CIK細胞共培養后,提高了細胞的增殖速度和殺傷活性,且使其對腫瘤細胞的殺傷作用更具特異性。然而,現有的DC-CIK共培養,是將收獲的DC細胞添加到CIK培養體系中,從而通過DC細胞與CIK細胞的結合,將DC細胞攜帶的抗原信息提成給CIK細胞;但是CIK的培養環境不利于DC細胞的生長,不能有效的長時間維持DC細胞的活性,從而影響DC細胞提呈抗原的效率。DC細胞成熟慢、生存期短,CIK細胞的擴增培養時間較長,兩種細胞共培養后存在培養時間不同步的問題,導致所獲的DC-CIK細胞活性降低。目前迫切需要一種可延長DC細胞生存期的DC-CIK共培養方法。
發明內容
本發明要解決的技術問題是:克服現有技術的不足,提供一種DC細胞與CIK細胞的共培養方法,該方法可明顯延長DC細胞的生存期,長時間保持DC細胞的活性。
本發明的技術方案為,該DC細胞與CIK細胞的共培養方法,由如下步驟組成:?1)提取單個核細胞、2)CIK細胞培養、3)DC細胞培養、4)DC細胞和CIK細胞混合培養、5)擴增培養;
其中,步驟4)DC細胞和CIK細胞混合培養具體操作如下:
4.1)將培養瓶中的DC培養基混勻后,轉移至無菌離心管;然后向培養瓶中加入10ml經4?℃預冷的生理鹽水,晃動培養瓶,并用10ml?移液管吹打瓶底的細胞,完畢后將培養瓶內液體移至無菌離心管,最終在離心管中得到用生理鹽水懸浮的DC細胞,即DC細胞懸液;
4.2)將收集好的DC細胞懸液在離心機內,室溫條件下離心10~20分鐘;離心,棄上清液,繼續用生理鹽水重懸細胞,獲得一次重懸細胞液,并對一次重懸細胞液進行取樣計數;
4.3)從層流室的4℃冰箱中取出培養基,靜置待培養基恢復至37℃;將步驟4.2)重懸細胞液進行離心,離心后棄上清液,用10ml??培養基重懸細胞,獲得二次重懸細胞液,并對二次重懸細胞液進行取樣計數;
4.4)吸取1.0×106個DC細胞、1.0×108個CIK細胞,在添加有培養基的培養體系中混合培養,培養體系為50ml?;按照50?~100ng/ml的濃度向培養體系中補加2500?ng~5000ng的因子GM-CSF,然后置于37℃、體積分數5~6%?的CO2培養箱繼續培養;培養12小時后,再次添加2500ng~5000ng的因子GM-CSF,置于37℃、體積分數5~6%?的CO2培養箱繼續培養。
優選的,所述步驟1)提取細胞采用如下操作:
1.1)轉移外周血:采集患者50~80ml?外周血,并轉移到無菌離心管中,平均每管20~40ml??;
1.2)鋪層加樣:將血樣與生理鹽水按1:1的體積比混合均勻,并緩慢加入盛有室溫的5~20ml?人淋巴細胞分離液的無菌離心管中,配平后進行離心;?
1.3)提取單個核細胞:離心完畢后,離心管內出現分層,吸取血漿生理鹽水層棄之,直至距白膜層5毫米處;將紅細胞層之上的所有液體轉移至無菌離心管中,按細胞懸液與生理鹽水體積比1:1向無菌離心管中補充生理鹽水,混勻;
1.4)洗滌Ⅰ:將步驟1.3)無菌離心管中所得的細胞進行離心,棄上清液,用生理鹽水重懸細胞,混勻;
1.5)洗滌Ⅱ:將所得細胞收集到一支離心管中,加生理鹽水至50ml?,充分混勻,離心,棄上清液;
1.6)洗滌Ⅲ:將所得細胞收集到一支離心管中,補生理鹽水至40ml?,充分混勻,取樣計數,離心,棄上清液,即得提取獲得外周血單個核細胞。
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