[發明專利]一種利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法在審
| 申請號: | 201310310257.2 | 申請日: | 2013-07-23 |
| 公開(公告)號: | CN104342432A | 公開(公告)日: | 2015-02-11 |
| 發明(設計)人: | 朱惠霖 | 申請(專利權)人: | 南京諾云生物科技有限公司 |
| 主分類號: | C12N15/09 | 分類號: | C12N15/09;C12N15/63;C12P7/42;C12P7/40;C12R1/645;C12R1/865 |
| 代理公司: | 南京眾聯專利代理有限公司 32206 | 代理人: | 顧進 |
| 地址: | 210033 江蘇省南*** | 國省代碼: | 江蘇;32 |
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| 摘要: | |||
| 搜索關鍵詞: | 一種 利用 基因工程 改造 制備 化合物 方法 | ||
1.一種利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法,其特征在于,該方法包括:載體構建中包含ent-貝殼杉烯酸氧化酶基因的敲除或/和優化后的ent-貝殼杉烯酸羥化酶基因的插入,所述的萜類化合物是ent-貝殼杉烯酸、甜菊醇、萊鮑迪甙A,萊鮑迪甙B,萊鮑迪甙C,萊鮑迪甙D,萊鮑迪甙E,萊鮑迪甙F或萊鮑迪甙M。
2.根據權利要求1所述的一種利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法,其特征在于,優化后的ent-貝殼杉烯酸羥化酶基因,其堿基序列如序列表中SEQ?ID?NO:4所示。
3.根據權利要求1或2所述的一種利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法,其特征在于,所述的利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法,其工程菌為大腸桿菌、酵母細胞、海藻細胞、植物細胞、革蘭氏陽性菌或真菌中的任意一種。
4.根據權利要求3所述的一種利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法,其特征在于,所述的酵母細胞為釀酒酵母細胞或亞羅酵母。
5.根據權利要求3所述的一種利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法,其特征在于,所述的革蘭氏陽性菌為芽孢桿菌細胞。
6.根據權利要求3所述的一種利用基因工程改造酶制備萜類化合物的方法,其特征在于,所述的真菌為鐮刀菌,?甘蔗鐮孢菌,?藤倉赤霉菌,木薯痂圓孢菌,?暗球腔菌。
7.一種基于基因工程改造酶制備ent-貝殼杉烯酸的方法,其特征在于,包括如下步驟:
(1)ent-貝殼杉烯酸氧化酶基因敲除載體的構建
以藤倉赤霉菌(Gibberella?fujikuroi)基因組DNA為模板,分別擴增左右同源臂,以pCambia1302為模板擴增潮霉素基因表達框,然后以同源重組的方法將3個片段連接至pAN7-1骨架中,測序驗證后,獲得正確的敲除載體;
(2)基因工程菌的獲得?
將藤倉赤霉菌(Gibberella?fujikuroi)接種到PDA固體培養上,27℃培養8天后,從新鮮斜面上取大小約0.5cm2的菌苔,磨碎后接入100ml?MYG液體培養基中,24℃,130r/min培養24小時后按1%的接種量(v/v)轉種到上述新鮮液體培養基中繼續培養15小時.菌絲用無菌水、1M的MgSO4各洗滌一遍;取大約1g濕菌絲于10ml溶壁酶液中,37℃溫育4小時,所述溶壁酶液配置方法為:10ml的1M?MgSO4中加入200mg溶壁酶,過濾除菌;懸浮液用3000rpm離心10min,棄去含菌絲體碎片的沉淀,上清用無菌水緩緩稀釋至MgSO4濃度為0.5M,3000rpm離心15min,沉淀原生質體用0.5M?MgSO4、1M山梨醇溶液各洗滌一遍,最后原生質體懸浮于1M山梨醇溶液中,適當稀釋后涂布于MYG固體再生培養基上,26℃培養2-3天,觀察再生情況;
將原生質體的濃度調為6x107個/ml,取0.4ml原生質體,加入10ug或20ug線性化的質粒DNA,混合后冰浴20min,加入100ul?PEG8000溶液,混勻后冰浴20min.再加入2mlPEG?8000溶液,混勻后室溫5min以上;用4ml山梨醇溶液稀釋,3000rpm離心10min,沉淀用2ml山梨醇溶液懸浮;取0.2ml?原生質體涂布于15ml的再生培養基上,26℃培養12小時后,覆蓋10ml含潮霉素的軟瓊脂MYG,26℃繼續培養6-7天后觀察結果;
(3)轉化子的檢出
在對照沒有生長的前提下,統計轉化平板上的抗性菌落數;計算轉化率;將轉化子接種到含抗生素的平板上測定其抗性水平;分別用PCR擴增測序法及Soutern?Blot的方法進行驗證轉化子;將陽性菌落轉接到含抗生素的PDA培養基上,重復繼代篩選6次,保存菌株;
(4)發酵產物的測定
所得赤霉工程菌在PDA培養基上培養7天后,接入種子培養基50ml中,在30℃、300rpm搖床培養48小時,然后以10%的接種量轉入發酵培養基,250ml三角瓶裝30ml發酵培養基,在30℃、300rpm發酵8天;發酵液經單層濾紙過濾后將濾液pH調至2.0,濾液經0.45um濾膜過濾,所得樣品進行HPLC色譜分析。
8.一種由上述ent-貝殼杉烯酸制得甜菊醇的方法,包括如下步驟:
(1)ent-貝殼杉烯酸羥化酶基因插入載體的構建
將來自甜葉菊(Stevia?Rebaudiana?Bertoni)編碼的ent-貝殼杉烯酸羥化酶(KAH,kaurenoic?acid-13hydroxylase)的多核苷酸?(Genbank?Accession?Number:?EU722415,SEQ?ID?NO:3)進行密碼子優化后通過全基因合成的方式獲得,以用于在藤倉赤霉菌(Gibberella?fujikuroi)中表達;將優化后的編碼ent-貝殼杉烯酸羥化酶的多核苷酸(SEQ?ID?NO:4)克隆到改進后的這pAN7-1表達載體中gpdA啟動子的控制下,得到可以表達ent-貝殼杉烯酸羥化酶的質粒;所用克隆方法為同源重組的方式,所用到的擴增引物為:
F4:??5'??CTTTTCTCTTTCTTTTCCCAATGGAGGCTTCTTACCTCTACATCT??3'
R4:??5'??TCAGTAACGTTAAGTGGATCCTTATTAGAGCTCAGAGAGGAGGTTG??3'
以Gibberella?fujikuroi基因組DNA為模板,分別擴增左右同源臂;以pCambia1302為模板擴增潮霉素基因表達框,然后以同源重組的方法將4個片段連接至pAN7-1骨架中,測序驗證后,獲得正確的插入載體;
(2)基因工程菌的獲得?
將藤倉赤霉菌(Gibberella?fujikuroi)接種到PDA固體培養上,27℃培養8天后,從新鮮斜面上取大小約0.5cm2的菌苔,磨碎后接入100ml?MYG液體培養基中,24℃,130rpm培養24小時后按1%的接種量(v/v)轉種到上述新鮮液體培養基中繼續培養15小時;菌絲用無菌水、1M的MgSO4各洗滌一遍;取大約1g濕菌絲于10ml溶壁酶液中,37℃溫育4小時,所述溶壁酶液配置方法為:10ml的1M?MgSO4中加入200mg溶壁酶,過濾除菌;懸浮液用3000rpm離心10min,棄去含菌絲體碎片的沉淀,上清用無菌水緩緩稀釋至MgSO4濃度為0.5?M,3000rpm離心15min,沉淀(原生質體)用0.5M?MgSO4、1M山梨醇溶液各洗滌一遍,最后原生質體懸浮于1M山梨醇溶液中,適當稀釋后涂布于MYG固體再生培養基上,26℃培養2-3天,觀察再生情況;
將原生質體的濃度調為6x107個/ml,取0.4ml原生質體,加入10ug或20ug線性化的質粒DNA,混合后冰浴20min.加入100ul?PEG8000溶液,混勻后冰浴20min.再加入2ml?PEG?8000溶液,混勻后室溫5min以上;用4ml山梨醇溶液稀釋,3000rpm離心10min,沉淀用2ml山梨醇溶液懸浮;取0.2ml?原生質體涂布于15ml的再生培養基上,26℃培養12小時后,覆蓋10ml含潮霉素的軟瓊脂MYG;26℃繼續培養6-7天后觀察結果;
(3)轉化子的檢出
在對照沒有生長的前提下,統計轉化平板上的抗性菌落數;計算轉化率;將轉化子接種到含抗生素的平板上測定其抗性水平;分別用PCR擴增測序法及Soutern?Blot的方法進行驗證轉化子;將陽性菌落轉接到含抗生素的PDA培養基上,重復繼代篩選6次,保存菌株;
(4)發酵產物的測定
所得赤霉工程菌在PDA培養基上培養7天后,接入種子培養基50ml中,在30℃、300rpm搖床培養48小時,然后以10%的接種量轉入發酵培養基,250ml三角瓶裝30ml發酵培養基,在30℃、300rpm發酵8天;發酵液經單層濾紙過濾后將濾液pH調至2.0,濾液經0.45um濾膜過濾,所得樣品進行HPLC色譜分析。
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